Для какого исследования мокрота собирается в стерильную чашку петри?

1 ответ на вопрос “Для какого исследования мокрота собирается в стерильную чашку петри?”

  1. Voodoogor Ответить

    Сбор мокроты на общий анализ:

    Цель:
    – диагностическая.
    Показания:
    – заболевания органов дыхания и ССС.
    Оснащение:
    – чистая стеклянная широкогорлая банка из прозрачного стекла, направление.
    Последовательность действий:
    1. Объяснить правила сбора, получить согласие.
    2. Утром почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой.
    3. Откашлять и собрать в банку 3-5 мл мокроты, закрыть крышкой.
    4. Оформить направление.
    5. Доставить в клиническую лабораторию в течение 2 часов.
    Примечание:
    – Для определения суточного количества мокроту собирают в течение суток в одну большую посуду и хранят в прохладном месте.
    – Мокроту рекомендуется собирать в специально оборудованном помещении у открытого окна или форточки.
    – Не допускается загрязнение банки с наружной стороны.
    Оценивается: консистенция (вязкая, студенистая, стекловидная), цвет (прозрачная, гнойная, серая, кровянистая), клеточный состав (наличие лейкоцитов, эритроцитов, эпителия, дополнительных включений.

    Сбор мокроты на бактериологическое исследование:

    Цель:
    – выявления возбудителя заболевания и определение чувствительности его к антибиотикам.
    Оснащение:
    – стерильная пробирка или банка с крышкой (заказывается в бак. лаборатории), направление.
    Последовательность действий:
    1. Объяснить цель и суть сбора мокроты, получить согласие.
    2. Утром натощак после туалета полости рта и до назначения а/б.
    3. Пробирку или банку поднести ко рту, открыть ее, не касаясь краев посуды руками и ртом откашлять мокроту и сразу закрыть крышкой, соблюдая стерильность.
    4. Отправить анализ в баклабораторию в течение 2 часов в контейнере спецтранспортом. Примечание: стерильность посуды сохраняется в течение 3 суток.
    Сбор мокроты на МБТ (микобактерии туберкулеза):
    Цель:
    – диагностическая.
    Порядок сбора мокроты:
    1. Объяснить суть и цель назначения, получить согласие.
    2. Оформить направление.
    3. Утром натощак после туалета полости рта после нескольких глубоких вдохов откашлять мокроту в чистую сухую банку (15-20 мл), закрыть крышкой. Если мокроты мало, то ее можно собирать в течение 1-3 суток, сохраняя в прохладном месте.
    4. Доставить анализ в клиническую лабораторию.
    Примечание: Если назначается посев мокроты на ВК, то мокрота собирается в стерильную посуду в течение 1 суток, храня в прохладном месте, и доставляется в баклабораторию.
    Сбор мокроты на атипичные клетки:
    Цель:
    – диагностическая (диагностика, исключение онкопатологии).
    Последовательность сбора:
    1. Объяснить пациенту правила сбора мокроты.
    2. Утром после туалета полости рта собрать мокроту в чистую сухую банку.
    3. Оформить направление.
    4. Доставить в цитологическую лабораторию сразу, т.к. атипичные клетки быстро разрушаются.

  2. Alsagar Ответить

    Материальное оснащение:
    – стерильные ватные тампоны, укрепленные на концах металлических проволочек, помещенные в стерильные пробирки;
    – шпатель;
    – стерильные пробирки или флаконы с пробками;
    – чашки Петри с питательной средой.
    Алгоритм I взятия материала:
    1) Детям старше 3 лет необходимо прополоскать рот кипяченой водой, маленьким детям протереть полость рта стерильными ватными тампонами, смоченными в физиологическом растворе.
    2) Положение больного такое же, как при заборе материала из зева.
    3) Вымыть руки, надеть маску и перчатки.
    4) Открыть рот больному, нажать шпателем на корень языка, вызывая у ребенка кашлевой рефлекс с отделением мокроты.
    5) Извлечь тампон из пробирки.
    6) Ввести тампон в полость рта вращая его пальцами вокруг оси и подхватывая мокроту.
    7) Поместить тампон в стерильную пробирку, не касаясь ее наружной поверхности.
    8) Выписать направление в клиническую или бактериологическую лабораторию:
    В бактериологическую лабораторию__________
    Отделение Пост Палата №__________________
    Ф.И.О. больного__________________________
    Возраст_________________________________
    Мокрота для бактериологического исследования
    Дата Роспись медицинской сестры____________
    Алгоритм II взятия материала:
    Для бактериологического исследования брать утренний или суточный объем мокроты (хранить в холодильнике).
    Больной собирает мокроту в стерильный флакон (в 200 гр. банку) путем отхаркивания.
    Емкость с исследуемым материалом доставить в лабораторию.
    Методика взятия содержимого зева для бактериологического исследования на коклюш
    Материальное оснащение:
    – шпатели;
    – чашка Петри с питательной средой (казеиново-угольный агар).
    Алгоритм I взятия материала:
    Положение больного такое же, как при взятии содержимого зева для бактериологического исследования.
    9) Чашка Петри с питательной средой должна быть подогрета до 37?С, для чего ее за 15-20 минут до забора мокроты поместить в термостат.
    10) Вымыть руки, надеть маску и перчатки.
    11) Открыть рот больному.
    12) Раздражая шпателем корень языка или заднюю стенку глотки, вызвать у ребенка приступ кашля.
    13) Приоткрыть чашку Петри с питательной средой.
    14) Поднести чашку ко рту больного для непосредственного сбора мокроты; расстояние от чашки до рта больного не должно превышать 10 см.
    15) Держать чашку возле рта больного 5-10 секунд.
    16) Выписать направление в бактериологическую лабораторию:
    В бактериологическую лабораторию__________
    Отделение Пост Палата №__________________
    Ф.И.О. больного__________________________
    Возраст_________________________________
    Содержимое зева для исследования на коклюш_
    Дата Роспись медицинской сестры____________
    Доставить исследуемый материал в бактериологическую лабораторию.

  3. Corne Ответить

    Цель. Изучение состава мокроты.
    Показания. Заболевания бронхолегочного аппарата.
    Противопоказания. Легочное кровотечение.
    Оснащение. Чистая сухая банка из прозрачного стекла с большим отверстием и плотно закрывающейся крышкой; направление в клиническую лабораторию.
    Техника выполнения взятия мокроты для исследования на общий анализ.
    1. Накануне вечером предупреждают пациента, чтобы утром с 6.00 до 7.00, не принимая пищи, воды, лекарств, не чистя зубов пастой и щеткой (щетка может травмировать слизистую и тогда в мокроте могут быть прожилки крови), он прополоскал рот кипяченой водой, а затем хорошо прокашлялся и, отхаркнув мокроту, сплюнул ее на дно банки, закрыл банку крышкой и поставил ее в определенном месте в санитарной комнате.
    2. Отправляют мокроту к началу работы в лабораторию (с 7.00 до 8.00).
    3. При поступлении результата его подклеивают в историю болезни.
    Примечания. Крышкой для банки для собирания мокроты на общий анализ может служить плотная бумага или полиэтилен, закрепленный вокруг отверстия банки резинкой. Курить пациенту до собирания мокроты не рекомендуется.

    Взятие мокроты для бактериологического исследования (на чувствительность к антибиотикам)

    Цель. Изучение микрофлоры мокроты; определение чувствительности микрофлоры мокроты к антибиотикам.
    Показания. Бронхиты, пневмония.
    Противопоказания. Легочное кровотечение.
    Оснащение. Направление в бактериологическую лабораторию; стерильная чашка Петри, завернутая в крафт-бумагу.
    Техника взятия мокроты для бактериологического исследования.
    1. Накануне вечером пациента предупреждают о предстоящем исследовании. Его просят, чтобы до момента забора мокроты (когда медицинская сестра придет к нему с лабораторной посудой) он не принимал пищи, воды, лекарств, не курил, не чистил зубы (антисептические средства, содержащиеся в пасте, ослабляют микрофлору) и приготовил стакан с кипяченой водой.
    2. К пациенту приходят утром до завтрака и просят прополоскать рот кипяченой водой и хорошо откашляться.
    3. Во время откашливаний освобождают чашку Петри от упаковки и снимают с нее крышку. Поднеся чашку Петри ко рту пациента, просят сплюнуть мокроту в чашку, не касаясь губами ее краев.
    4. Сразу же закрывают чашку Петри, заворачивают ее и отправляют в лабораторию вместе с направлением.
    5. При поступлении результата исследования его подклеивают в историю болезни.
    Примечание. Не рекомендуется оставлять пациенту чашку Петри с вечера во избежание нарушения ее стерильности.

    Взятие мокроты на микобактерии туберкулеза

    Цель. Выделение микобактерии туберкулеза
    Показания. Подозрение на туберкулез легких.
    Оснащение. Стерильная сухая банка с плотно закрывающейся крышкой.
    Техника взятия мокроты на микобактерии туберкулеза
    1. Накануне вечером пациента предупреждают о предстоящем исследовании следующим образом: «Завтра с 6.00 утра вам нужно начать собирать мокроту на исследование. Мокрота на назначенное вам исследование собирается в течение суток. Это значит, что всю мокроту, которая будет у вас выделяться при кашле, необходимо сплевывать в эту банку. Банку, пожалуйста, ставьте в прохладное место и плотно закрывайте крышкой». Необходимо показать пациенту то место, где в течение суток будет храниться банка с мокротой.
    2. Собранную мокроту отправляют в бактериологическую лабораторию.
    3. Результат исследования вклеивают в медицинскую карту стационарного больного.
    Примечания. Если у пациента выделяется мало мокроты и ее будет недостаточно для исследования, то мокроту можно собирать в течение 3 сут, сохраняя в прохладном месте.

  4. Gamer_Pro_Chanel Ответить

    Бронхоскопия.
    Бронхоскопия– метод осмотра бронхов с помощью специального прибора бронхофиброскопа.
     Цели процедуры:
    Диагностика.
    Визуально осмотрев слизистую бронхов крупного и среднего калибра, можно обнаружить эрозии, язвы, воспалительные изменения, новообразования.
    С помощью специальных щипчиков можно взять кусочек тканей из подозрительного места
    для цитологического и гистологического исследования
    Лечебная.
    Можно извлечь инородное тело, удалить полипы. Можно извлечь гнойную, вязкую мокроту, а так же ввести в полость бронха антибиотики и другие лекарственные вещества.
    Цели подготовки:
    Информировать пациента о предстоящей процедуре и получить его согласие.
    Подготовить необходимое оснащение для обеспечения четкого выполнения исследования.
     Оснащение:
    Бронхоскоп
    Резиновые перчатки
    Шприцы 10 и 20 мл
    Раствор анестетика (новокаин 1%, тримекаин 5%, лидокаин 2%)
    Раствор атропина 0,1%
    Раствор димедрола 1%
    Направление на исследование
    Набор для помощи при анафилактическом шоке
     Информация для пациента по подготовке к исследованию.
    В доступной форме предоставить пациенту или его родственникам информацию о сути и целях предстоящего исследования. Получить согласие.
    Предупредить пациента, что в день исследования нельзя есть, пить, курить.
    Накануне вечером по назначению врача провести премедикацию транквилизаторами.
    Непосредственно перед исследованием предложить пациенту опорожнить мочевой пузырь.
    Придти в эндоскопический кабинет с полотенцем и направлением в назначенное время.
     Методика проведения исследования:
    Непосредственно перед исследованием, за 15 мин, по назначению врача ввести пациенту подкожно 0,1% 1 мл аптропина, 1% 1 мл димедрола.
    Надеть стерильные перчатки.
    Попросить пациента сесть на стул, слегка запрокинув голову.
    Провести анестезию верхних дыхательных путей.
    Ассистировать врачу при проведении бронхоскопии.
    После окончания процедуры сбросить перчатки и отработанные инструменты в дезраствор.
    Проводить пациента в палату, предупредить о необходимости не принимать пищу и не курить в течение 2 часов после исследования.
    Постуральный дренаж.
    Это использование определенного положения тела – специальные «дренажные» позы и упражнения с форсированным удлиненным выдохом для улучшения отхождения мокроты.
    Противопоказания:
    Кровохарканье.
    Возникновение во время процедуры значительной одышки или приступа удушья.
    Повышение артериального давления.
    Головокружение.
    Аритмии.
    Алгоритм действия:
    Объяснить пациенту смысл и цели процедуры.
    Получить его согласие.
    Приготовить плевательницу.
    Придать одно из дренажных положений.
    Наблюдать за состоянием пациента и правильностью выполнения процедуры.
    Повторить процедуру 3 – 5 раз с перерывами в 10 – 15 минут.
    Придать пациенту обычное положение в постели.
    Провести дезинфекцию мокроты и плевательницы.
    Протоколирование о выполненной процедуре в сестринской карте.
    Методика выполнения процедуры:
    Упражнения выполняются 2 раза в день – утром и вечером.
    Предварительно принимают отхаркивающие средства – настой термопсиса, багульника, мать-и-мачехи.
    Через 20 – 30 минут после этого больной поочередно занимает дренажные положения (смотри ниже).
    В каждом положении больной выполняет вначале 4 – 5 глубоких медленных дыхательных движений, вдыхая воздух через нос, а выдыхая через сжатые губы. Затем после медленного глубокого вдоха производится форсированный выдох с настойчивым покашливанием 3 – 5 раз.
    Хороший результат достигается при сочетании дренажных положений с различными методами вибрации грудной клетки.
    А. Лежа в кровати больной поворачивается вокруг продольной оси своего тела и в промежуточных положениях (45?) делает форсированные выдохи. Необходимо совершить полный оборот на 360?.

  5. Kazrami Ответить

    Цель:
    1. Изучение микрофлоры мокроты.
    2. Определение чувствительности микрофлоры мокроты к антибиотикам.
    Оснащение:стерильная посуда (банка) или чашка Петри.
    № отделения № палаты
    Направление
    В бактериологическую лабораториюМокрота на микрофлору и чувствительность к антибиотикам
    Иванов Иван Петрович
    Дата
    Попись м/с
    Алгоритм действий медсестры:
    1. Взять в бактериологической лаборатории стерильную посуду.
    2. Оформить направление.
    3. Накануне вечером проинструктировать пациента о порядке сбора мокроты.
    4. Отнести собранный материал в бактериологическую лабораторию
    5. Подклеить полученные результаты в историю болезни пациента.
    Инструктаж пациента:
    «Вам необходимо собрать для исследования утреннюю мокроту. В 8 часов натощак почистите зубы и тщательно прополощите рот кипяченой водой, затем откашляйтесь и сделайте 2-3 плевка мокроты в банку, стараясь не допускать попадания слюны. Посуда дается стерильной, поэтому не касайтесь ее краев руками или ртом, а после откашливания мокроты сразу же закройте крышкой и отдайте медсестре».
    Примечание. Стерильность посуды сохраняется в течение 3-х суток.
    Антибактериальные препараты должны быть отменены за 2 суток до сбора материала.
    Мокроту до исследования в лаборатории можно сохранить на средней полке дверцы холодильника не более 2-х часов.

  6. Arabor Ответить

    Мокрота – это патологический секрет дыхательных путей, выделяющийсяпри каш*тс и образующийсяпри повреждениислизистой оболочки трахеи, бронхови легочнойткани ипфскциоиными, физическими или химическими агентами.
    Исследование мокроты у больных пневмониями во многих случаях (хотя далеко не Всегда)позволяет:
    • определить характер патологического процесса;
    . угочнить этиологию воспаления дыхательных путей и легочной ткани, в частном п
    выделить возбудителя воспаления; . определить основные свойства возбудителя, в том числе его чувствительность к an
    тибиотикам;
    • оцепить эффективность лечения. Анализ мокроты включает:
    1. Макроскопическое исследование (определение характера мокроты, ее количества, цвета, прозрачности, запаха, консистенции, наличия примесей и различных включе пий).
    2. Микроскопическое исследование (определение клеточных и других элементом мок роты, а также изучение микробной флоры в нативных и окрашенных мазках).
    3. Микробиологическое исследование (выявление и изучение свойств предположи тельного возбудителя заболевания).
    Химическое исследование мокроты пока не нашло широкого распространения в ЕСЛИ нической практике, хотя также имеет определенное диагностическое значение.
    Сбор мокроты для исследования. Мокроту для исследования собирают утром наш щак после предварительного тщательного полоскания рта и горла кипяченой ВОДОЙ Иногда рекомендуют после этого прополоскать рот 1% раствором алюминиевых КВАС цов.
    Больной откашливает мокроту непосредственно в чистую сухую стеклянную посуду с плотно закрывающейся крышкой. Если предполагается микробиологическое исслсдо-ваше мокроты, ее откашливают в стерильную чашку Петри или другую стерильную ем­кость. Важно предупредить больного о том, что при сборе мокроты попадание слюны в образцы, направляемые в лабораторию, может существенно изменить результаты исследования. В лабораторию направляется только свежевыделенная мокрота, посКОЛЫ) длительное ее стояние, особенно при комнатной температуре, ведет к аутолизу клеточ ных элементов и размножению микрофлоры. При необходимости допускается непрО должителыюе хранение мокроты в холодильнике.

  7. Nikolkree Ответить

    Исследования Мокроты
    Основная
    1.Мухина С.А., Тарновская И.И. «Теоретические основы сестринского дела», «Практическое руководство по основам сестринского дела» Москва издательская группа «ГЭОТАР-Медиа» 2013 г.- 56 – 68, 435- 446.
    Блок информации для практического занятия
    ОСНАЩЕНИЕ:
    Чистая сухая градуированная банка светлого стекла.
    № отделения № палаты
    НАПРАВЛЕНИЕ
    В клиническую
    лабораторию
    Мокрота на общий анализ
    Попов Семён Петрович
    Год рождения
    Дата
    Подпись м/с
    АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЯ МЕДСЕСТРЫ:
    1. Провести выборку назначений из истории болезни (листок назначений), данные о лабораторных и инструментальных методах исследования внести в соответствующий журнал.
    2. Подготовить лабораторную посуду.
    3. Оформить направления, прикрепить их к посуде с помощью аптечной резинки.
    4. Накануне вечером получить согласие пациента на исследование, проинструктировать о порядке сбора мокроты и отдать подготовленную посуду.
    5. К 8.30 утра доставить посуду с собранной мокротой в клиническую лабораторию для исследования.
    6. Полученные на следующий день результаты подклеить в историю болезни.
    ИНСТРУКТАЖ ПАЦИЕНТА:
    “Вам необходимо собрать для исследования утреннюю мокроту. В 8 часов натощак почистите зубы, и тщательно прополощите рот водой, после этого сделайте несколько глубоких вздохов и откашливайте мокроту в эту банку, всего 3-5 мл (чайную ложку). Банку с мокротой закройте и оставьте в специальном ящике на полу в санитарной комнате”.
    ПРИМЕЧАНИЕ:
    Если у пациента имеется кровоточивость десен, зубы чистить не следует. Тщательно прополоскать рот раствором фурацилина, содой, чистой водой.
    2. Анализ мокроты на бактериологическое исследование.
    ОСНАЩЕНИЕ:
    Стерильная посуда (банка) или чашка Петри.
    № отделения № палаты
    НАПРАВЛЕНИЕ
    В бактериологическую
    лабораторию
    Мокрота на микрофлору и чувствительность к антибиотикам
    Николаев Сергей Петрович
    ГОД РОЖДЕНИЯ
    Дата
    Подпись м/с
    АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЯ МЕДСЕСТРЫ:
    1. Взять в бактериологической лаборатории стерильную посуду;
    2. Оформить направление;
    3. Накануне вечером проинструктировать пациента о порядке сбора мокроты;
    4. Отнести собранный материал в бактериологическую лабораторию;
    5. Подклеить полученные результаты в историю болезни пациента.
    ИНСТРУКТАЖ ПАЦИЕНТА;
    “Натощак, в 8 часов утра перед откашливанием почистите зубы, и тщательно прополощите рот кипяченой водой или раствором фурацилина, затем сделайте 2-3 плевка мокроты в банку, стараясь не допускать попадания слюны. Посуда дается стерильной, поэтому не касайтесь ее краев руками или ртом, а после откашливания мокроты сразу же закройте крышкой и отдайте медсестре”.

  8. Sirarana Ответить

    Вид исследования
    Цель
    Оснащение
    Инструктаж пациента
    Примечание
    1.Общий анализ
    мокроты
    Определение физико-химических свойств (цвет, запах, консистенция, плотность)
    Чистый сухой флакон светлого стекла с крышкой
    Натощак. Почистить зубы
    Прополоскать рот водой
    Сделать несколько глубоких вдохов и выдохов
    При кашле собрать мокроту 3-5 мл
    (1 чайная ложка)
    Если у пациента имеется кровоточивость дёсен, зубы чистить не следует.
    2.Бактериологическое исследование мокроты
    Определяют мокроту на микрофлору и чувствительность к антибиотикам.
    Стерильная посуда с крышкой (флакон или чашка Петри)
    Натощак Почистить зубы
    Прополоскать рот кипяченой водой или фурациллином. Сделать несколько глубоких вдохов и выдохов. При кашле собрать
    3-5 мл в емкость, стараясь не допускать попадания слюны
    Не касаться краёв емкости.
    Отмена антибактериальных препаратов за двое суток.
    При необходимости хранение в холодильнике не более 2х часов.
    3. Анализ мокроты на микобактерии туберкулёза
    Выявление палочек Коха
    Чистый сухой флакон с крышкой
    Натощак в 8 утра
    почистить зубы, прополоскать рот.
    Сделать несколько глубоких вдохов и выдохов
    При кашле собрать мокроту 3-5 мл
    Если мокрота в малом количестве, то ее собирают в течение 3-х суток.
    Обеззараживание мокроты и карманных плевательниц
    Мокроту заливают 5% р-ром хлорамина на 12 часов (из расчета 2 объема дез. р-ра на 1часть мокроты) или 10 % р-ром хлорной извести на 1 час или засыпают хлорной известью (200 грамм на литр).
    После обеззараживания мокроту сливают в канализацию, а плевательницы или посуду, в которой дезинфицировали мокроту, моют обычным способом.
    Плевательницы погружают в 5% р-р хлорамина на час.

  9. Wisniewski Ответить

    Алгоритм действия медсестры.
    Манипуляция № 40.
    « Технология сбора мокроты для бактериологического исследования»
    Цель:диагностика вида микрофлоры в мокроте для контроля над распространением инфекции; обеспечить качественную подготовку для получения достоверного результата исследования;
    Показания: –определяет врач;
    Противопоказания: –определяет врач;
    Оснащение:
    стерильная чашка Петри; направление для диагностического исследования; лоток для отработанного материала; накрытый стерильный лоток с инструментарием (пинцет); емкость с ватными шариками в 70% спирте; контейнер для транспортировки биологического материала; перчатки; емкости с дез. растворами.
    1. Объяснить пациенту цель, ход предстоящей манипуляции, получить добровольное согласие пациента на выполнение манипуляции;
    2. Объяснить пациенту, что сбор мокроты целесообразно проводить до начала антибиотикотерапии, и что исследование проводится натощак;
    3. Обучить пациента технике сбора мокроты:
    · почистить зубы не позднее, чем за 2 ч. до исследования;
    · прополоскать рот и глотку непосредственно перед сбором мокроты;
    · приоткрыть чашку, не касаясь внутренней поверхности;
    · откашлять мокроту – 5мл. в чашку без примеси слюны;
    · закрыть чашку Петри;
    4. Убедиться, что пациент понял полученную информацию, отдать пациенту стерильную чашку Петри для сбора мокроты;
    5. После сбора мокроты, обработать руки на гигиеническом уровне надеть перчатки;
    6. Поместить чашку Петри в контейнер для транспортировки биологической жидкости, доставить вместе с заполненным направлением на диагностическое исследование в лабораторию;
    7. Снять перчатки, маску, обработать руки на гигиеническом уровне;
    8. Инфекционная безопасность:
    · замочить перчатки в 3% р-р хлорамина-60 мин.
    · замочить маску в 3% р-р хлорамина – 120 мин;
    · замочить лоток для отраб. материала в 3% р-р хлорамина – 60 мин;
    9. Обработать руки на гигиеническом уровне.
    « Технология сбора мокроты для исследования на БК»
    Цель:обеспечить качественную подготовку для получения достоверного результата исследования мокроты, содержащей достаточное количество микобактерий туберкулеза;
    Показания: –определяет врач;
    Противопоказания: –определяет врач;
    Оснащение:
    Чистая, сухая мокротница; направление для диагностического исследования; лоток для отработанного материала; накрытый стерильный лоток с инструментарием (пинцет); емкость с ватными шариками в 70% спирте; контейнер для транспортировки биологического материала; перчатки; емкости с дез. растворами.

  10. frogger Ответить

    Цель: Собрать мокроту в количестве 3-5 мл в стеклянную чистую посуду.
    Показания: При заболеваниях дыхательной системы.
    Противопоказания: Определяет врач.
    Оснащение:
    1. Чистая сухая стеклянная банка.
    2. Бланк-направление в клиническую лабораторию.
    3. Аптечная резинка.
    4. Перчатки.
    Последовательность действий м/с:
    1. Информируйте пациента о предстоящей манипуляции и ходе ее выполнения.
    2. Подготовьте лабораторную посуду.
    3. Оформите направление, прикрепите к посуде с помощью аптечной резинки.
    4. Утром натощак покажите пациента прополоскать рот и зев питьевой водой.
    5. Оденьте перчатки, возьмите банку.
    6. Предложите пациенту глубоко подышать, откашляться и сплюнуть мокроту в банку, не касаясь краев, всего 3-5 мл.
    7. Доставьте посуду с собранной мокротой в клиническую лабораторию для исследования.
    8. Полученный результат подклейте в историю болезни.
    9. Мокрота собрана в количестве 3-5 мл и доставлена в лабораторию.
    ВЗЯТИЕ МОКРОТЫ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ
    Цель: Собрать 3-5 мл мокроты в стерильную посуду и доставить в лабораторию в течение часа.
    Показания: Назначение врача.
    Противопоказания: Выявляются в процессе обследования пациента.
    Оснащение:
    1. Стерильная емкость с крышкой (банка с крышкой или чашка Петри).
    2. Направление в бактериологическую лабораторию.
    3. Аптечная резинка.
    4. Перчатки.
    Возможные проблемы:
    1. Психологические (повышенный рвотный рефлекс и брезгливое отношение к данному вмешательству).
    2. Затруднения при кашле.
    Последовательность действий м/с:
    1. Информируйте пациента о предстоящей манипуляции и ходе ее выполнения.
    2. Возьмите в баклаборатории стерильную посуду.
    3. Предложите натощак пациенту почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой или раствором фурациллина (0,02%).
    4. Оформите направление.
    5. Оденьте перчатки.
    6. Снимите аккуратно крышку со стерильной емкости.
    7. Предложите пациенту сделать 2-3 глубоких вдоха, покашлять и сделать 2-3 плевка мокроты в емкость так, чтобы рот его не касался краев емкости.
    8. Закройте аккуратно крышку.
    9. Прикрепите аптечной резинкой направление, снимите перчатки, вымойте руки.
    10. Отнесите собранный материл в баклабораторию, вымойте руки.
    11. Подклейте полученный результат в историю болезни.
    12. Мокрота собрана в достаточном количестве в течение часа и доставлена в баклабораторию. Результат анализа получен.
    Примечания:
    1. При обучении пациента и родственников попросите их продемонстрировать вам последовательность действий.
    2. Мокроту доставить в лабораторию необходимо сразу или при условии хранения в холодильнике при температуре +40С в первые 2 часа.

  11. Shadowbeard Ответить

    22. Оказание первой доврачебной помощи при кровохарканье
    и легочном кровотечении.
    Показания: При заболеваниях дыхательной системы.
    Противопоказания: Определяет врач.
    Последовательность действий м/с с обеспечением безопасности окружающей среды:
    1. Информируйте пациента о предстоящей манипуляции и ходе ее выполнения.
    2. Больному необходимо обеспечить полный физический покой.
    3. Необходимо усадить больного в кровати в полусидячем положении с наклоном в пораженную сторону для того, чтобы избежать попадания крови в здоровое легкое.
    4. На пораженную половину грудной клетки кладут пузырь со льдом. Больному дают проглатывать небольшие кусочки льда, что приводит к рефлекторному спазму и уменьшению кровенаполнения кровеносных сосудов легких.
    5. Кровохарканье, а тем более, легочное кровотечение сопровождается бурной эмоциональной реакцией страха, как самого больного, так и его близких, особенно, если оно возникло впервые. В связи с этим необходимо постараться успокоить больного и его близких, вселив уверенность в отсутствии реальной опасности для жизни.
    6. Для уменьшения эмоциональной реакции со стороны больного и его близких рекомендуется использование постельного и нательного белья, а также платков и полотенец не белого, а темных цветов, например, зеленого, на которых кровь не так заметна и выглядит темными, а не красными пятнами.
    7. Если кровохарканье или легочное кровотечение сопровождается кашлем необходимо дать больному по назначению врача противокашлевые средства.
    8. Воздействие высокой температуры может спровоцировать усиление кровотечения. Поэтому больной может есть только холодную и полужидкую пищу.
    9. Категорически запрещается применение горячей ванны или душа, постановка банок, горчичников, грелок и горячих компрессов на грудную клетку. До осмотра врачом больному нельзя двигаться и разговаривать.
    23. Умение пользоваться карманным ингалятором, обучение
    больного пользованию карманным ингалятором.
    Показания: Бронхиальная астма (для улучшения проходимости бронхов).
    Противопоказания: Выявляются в процессе обследования пациента.
    Оснащение:
    1. Ингалятор с лекарственным веществом.
    2. Ингалятор без лекарственного вещества.
    Возможные проблемы пациента:
    1. Страх, перед применением ингалятора или лекарственного вещества.
    2. Снижение интеллектуальных возможностей и др.
    3. Затрудненный вдох при введении лекарственного вещества через рот.
    Последовательность действий м/с с обеспечением безопасности окружающей среды:
    1. Информируйте пациента о пользовании ингалятора.
    2. Информируйте пациента о лекарственном средстве.
    3. Проверьте название и срок годности лекарственного вещества.
    4. Выполните гигиеническую обработку рук.
    5. Продемонстрируйте пациенту выполнение процедуры, используя ингаляционный баллончик без лекарственных веществ.
    6. Усадите пациента.
    7. Снимите с мундштука баллончика защитный колпачок.
    8. Поверните баллончик с аэрозолем вверх дном.
    9. Встряхните баллончик,
    10. Сделайте глубокий выдох.
    11. Возьмите мундштук баллончика в рот, плотно обхватив его губами.
    12. Сделайте глубокий вдох через рот и одновременно нажмите на дно баллончика.
    13. Задержите дыхание на 5-10 сек.
    14. Извлеките мундштук изо рта.
    15. Сделайте спокойный выдох.
    16. Продезинфицируйте мундштук.
    17. Предложите пациенту самостоятельно выполнить процедуру с ингалятором, наполненным лекарственным веществом.
    18. Закройте ингалятор защитным колпачком.
    19. Вымойте руки.
    Оценка достигнутых результатов: Пациент правильно продемонстрировал технику ингаляции с помощью ингаляционного баллончика.
    Примечание: Количество ингаляций определяет врач. Если состояние пациента позволяет, то лучше эту процедуру проделать стоя, так как дыхательная экскурсия при этом эффективнее.
    24. Определение основных характеристик артериального
    пульса на лучевой артерии.
    ПУЛЬС – толчкообразные колебания стенок сосудов, вызванные движением крови, выталкиваемой сердцем.
    МЕСТА ОПРЕДЕЛЕНИЯ ПУЛЬСА:
    – лучевая артерия,
    – височная артерия,
    – сонная артерия.
    – артерия тыльной стороны стопы.
    ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ ДЕЙСТВИЙ:
    1. Кистью своей руки охватите область ЛУЧЕЗАПЯСТНОГО сус­тава пациента так, чтобы БОЛЬШОЙ палец располагался на ТЫЛЬНОЙ стороне предплечья.
    2. Остальными пальцами НА ПЕРЕДНЕЙ поверхности сустава пальпируйте лучевую артерию, прижимая ее к лучевой кости. ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ:
    – пульсовая волна ощущается как расширение артерии;
    – исследование пульса следует начинать на ОБЕИХ руках;
    – при отсутствии разницы пульса в дальнейшем ограничива­ются его исследованием на одной руке;
    – у здоровых людей частота пульса СООТВЕТСТВУЕТ частоте сердечных сокращений и равна 60-80 в одну минуту;
    – учащение ЧСС БОЛЕЕ 90 в 1 мин. называется ТАХИКАРДИЕЙ,
    – урежение ЧСС менее 60 в мин. называется БРАДИКАРДИЕЙ;
    – частота пульса равна количеству пульсовых волн, определяе­мых в течение 1 минуты
    – во время сна происходит урежение числа сердечных сокра­щений на 10 в 1 минуту;
    – результат подсчета пульса медсестра отмечает графически цветным карандашом (чаще черным или синим) в листе наблюдения за пациентом;
    – повышение температуры тела на 1 градус увеличивает число пульсовых ударов на 10 в 1 мин.;
    – редкий пульс (брадикардия) может наблюдаться у спортсменов и тренированных людей;
    – в норме пульс ритмичный;
    – расстройства сердечного ритма называются АРИТМИЯМИ;
    – при аритмиях частота пульса может быть меньше частоты сердечных сокращений. Разница между частотой сердечных сокраще­ний называется ДЕФИЦИТОМ ПУЛЬСА.
    ЗАПОМНИТЕ НЕСКОЛЬКО ПРАВИЛ:
    – не следует сильно прижимать артерию, так как под давлением пульсовая волна может исчезнуть;
    – не следует пальпировать пульс одним пальцем, поскольку в нем проходит пульсирующая артерия, это может ввести в заблуждение ис­следующего.

  12. Salanim Ответить

    ОСНАЩЕНИЕ:
    Чистая сухая градуированная банка светлого стекла.
    № отделения  № палаты
    НАПРАВЛЕНИЕ
    В клиническую
    лабораторию
    Мокрота на общий анализ
    Попов Семён Петрович
    Год рождения
    Дата
    Подпись м/с
    АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЯ МЕДСЕСТРЫ:
    1. Провести выборку назначений из истории болезни (листок назначений), данные о лабораторных и инструментальных методах исследования внести в соответствующий журнал.
    2. Подготовить лабораторную посуду.
    3. Оформить направления, прикрепить их к посуде с помощью аптечной резинки.
    4. Накануне вечером получить согласие пациента на исследование, проинструктировать о порядке сбора мокроты и отдать подготовленную посуду.
    5. К 8.30 утра доставить посуду с собранной мокротой в клиническую лабораторию для исследования.
    6. Полученные на следующий день результаты подклеить в историю болезни.
    ИНСТРУКТАЖ ПАЦИЕНТА:
    “Вам необходимо собрать для исследования утреннюю мокроту. В 8 часов натощак почистите зубы, и тщательно прополощите рот водой, после этого сделайте несколько глубоких вздохов и откашливайте мокроту в эту банку, всего 3-5 мл (чайную ложку). Банку с мокротой закройте и оставьте в специальном ящике на полу в санитарной комнате”.
    ПРИМЕЧАНИЕ:
    Если у пациента имеется кровоточивость десен, зубы чистить не следует. Тщательно прополоскать рот раствором фурацилина, содой, чистой водой.
    2. Анализ мокроты на бактериологическое исследование.
    ОСНАЩЕНИЕ:
    Стерильная посуда (банка) или чашка Петри.
    № отделения № палаты
    НАПРАВЛЕНИЕ
    В  бактериологическую
    лабораторию
    Мокрота на микрофлору и чувствительность к антибиотикам
    Николаев Сергей Петрович
    ГОД РОЖДЕНИЯ
    Дата
    Подпись м/с
    АЛГОРИТМ ДЕЙСТВИЯ МЕДСЕСТРЫ:
    1. Взять в бактериологической лаборатории стерильную посуду;
    2. Оформить направление;
    3. Накануне вечером проинструктировать пациента о порядке сбора мокроты;
    4. Отнести собранный материал в бактериологическую лабораторию;
    5. Подклеить полученные результаты в историю болезни пациента.
    ИНСТРУКТАЖ ПАЦИЕНТА;
    “Натощак, в 8 часов утра перед откашливанием почистите зубы, и тщательно прополощите рот кипяченой водой или раствором фурацилина, затем сделайте 2-3 плевка мокроты в банку, стараясь не допускать попадания слюны. Посуда дается стерильной, поэтому не касайтесь ее краев руками или ртом, а после откашливания мокроты сразу же закройте крышкой и отдайте медсестре”.
    ПРИМЕЧАНИЕ:
    Стерильность посуды сохраняется в течение 3-х суток.

  13. Вендетта Ответить

    Цель. Изучение микрофлоры мокроты; определение чувствительности микрофлоры мокроты к антибиотикам.
    Показания. Бронхиты, пневмония.
    Противопоказания. Легочное кровотечение.
    Оснащение. Направление в бактериологическую лабораторию; стерильная чашка Петри, завернутая в крафт-бумагу.
    Техника взятия мокроты для бактериологического исследования.
    1. Накануне вечером пациента предупреждают о предстоящем исследовании. Его просят, чтобы до момента забора мокроты (когда медицинская сестра придет к нему с лабораторной посудой) он не принимал пищи, воды, лекарств, не курил, не чистил зубы (антисептические средства, содержащиеся в пасте, ослабляют микрофлору) и приготовил стакан с кипяченой водой.
    2. К пациенту приходят утром до завтрака и просят прополоскать рот кипяченой водой и хорошо откашляться.
    3. Во время откашливаний освобождают чашку Петри от упаковки и снимают с нее крышку. Поднеся чашку Петри ко рту пациента, просят сплюнуть мокроту в чашку, не касаясь губами ее краев.
    4. Сразу же закрывают чашку Петри, заворачивают ее и отправляют в лабораторию вместе с направлением.
    5. При поступлении результата исследования его подклеивают в историю болезни.
    Примечание. Не рекомендуется оставлять пациенту чашку Петри с вечера во избежание нарушения ее стерильности.
    К основным исследованиям относятся измерение роста и веса больного, определение артериального давления, клинический анализ крови и мочи, определение группы крови и резус-фактора, рентгеноскопия органов грудной клетки, исследование кала на яйца глистов. При некоторых заболеваниях очень важно знать исходные показатели веса больного, так наблюдение за динамикой веса может иметь большое значение при подозрении на злокачественные новообразования, при подготовке к операции больных с тиреотоксическим зобом. Данные измерения роста нужны при некоторых методиках определения основного обмена. Анализ крови, который берут у всех поступивших больных, помогает врачу в постановке диагноза и лечении. Если больному по характеру заболевания, объему предстоящей операции потребуется переливание крови, необходимо определить группу крови и резус-принадлежность. Операционная травма усиливает нагрузку на почки, поэтому в предоперационном периоде изучают состояние почек, производят анализ мочи. Сестра следит за своевременной отправкой мочи на анализ и измеряет при необходимости суточное количество мочи (диурез). Иногда показатели диуреза диктуют проведение ряда дополнительных мероприятий в предоперационной подготовке больного. У всех больных, которые поступают для плановых операций, берут кровь для постановки реакции Вассермана. При положительной реакции иногда меняют тактику — операцию либо откладывают, либо отменяют. Состояние нервной системы, психики больного во многом определяет исход операции. В этом плане поведение медицинского персонала может очень помочь или, наоборот, принести огромный вред. Сестра является главным помощником врача в подготовке психики больного. Большинство больных волнуются перед операцией, а некоторые— настолько, что отказываются от оперативного лечения. В тех случаях, когда операция необходима, когда от нее зависит жизнь больного, сестра должна помочь врачу убедить больного в необходимости оперативного вмешательства.

  14. wiskeyslove Ответить

    Следует также отметить, что для культивирования внутриклеточных возбудителей пневмоний (микоплазмы, легионеллы, хламидии, риккетсии) используют специальные селективные питательные среды. Рутинное микробиологическое исследование с исполь­зованием обычных питательных сред (агар-агар) никогда не дает положительных ре­зультатов. Поэтому выбор конкретных методов микробиологического исследования должен проходить с участием лечащего врача, который обязан информировать врача-ла­боранта об имеющихся у него подозрениях относительно возможной роли вггутрикле-точпых возбудителей в возникновении пневмонии у данного пациента.
    Следует добавить, что в реальной клинической практике даже технически СОВвр шепиое микробиологическое исследование мок/юты позволяет ВЫЯВИТЬвозбуди геля заболевания не чаще, чем в 40-60% случаев заболевания. Поэтому для верификации возбудителя могут быть использованы другие современные методы исследования. Информативность бактериологического исследования может быть существенно новы |вепа при использовании в качестве исследуемого биологического материала не мокро тм| а трахеоброихиалыюго аспирата, жидкости, полученной при броихоадьнсолярпом лаваже (ЖБАЛ), бронхоскопии и т.п. Методы получения бропхоадьвеолярпого содер жимого и техника бронхоскопии подробно описаны в главе 4.
    Кроме того, для выявления возбудителей пневмонии может быть использован метол иммуиофлюоресценции различных биологических материалов (материал броИХОСКОпии, кровь, плевральное содержимое и.т.п.), методы ПЦР-диагиостики, исследование уровня специфических антител в сыворотке крови. К сожалению, до сих пор эти спосо бы диагностики не нашли широкого клинического применения и пока используются лишь в крупных специализированных центрах и лабораториях.
    Определение чувствительности к антибиотикам
    Определение чувствительности к антибиотикам основано на оценке роста микроор ганизмов, культивируемых на плотных или жидких питательных средах в присутствийантибиотиков. Наиболее простым способом является посев взвеси микроорганизмов вы деленной культуры на поверхность плотной питательной среды (агара) в чашках Петри На поверхность чашек помещают диски с антибиотиками в стандартных концентрациях и инкубируют при 37,5°С в течение 18 ч. Результаты оценивают, измеряя с помощью щ пейки диаметр зоны задержки роста микробов.
    Более точные данные могут быть получены при применении количественных мсти Зов с определением минимальной подавляющей концентрации (МПК) антибиотиков. С этой целью готовят серию двукратных разведений антибиотиков в жидкой питатель­ной среде (бульон) и добавляют 0,2 мл взвеси культуры исследуемых микроорганизмов в концентрации 105— 106 м.т./мл. Все образцы, включая контрольный, не содержащий антибиотиков, инкубируют при 37,5°С в течение 24 ч. Минимальная концентрация ап тибиотика в последней пробирке, в которой наблюдалась полная задержка роста культу­ры, соответствует МПК препарата и отражает степень чувствительности микроорганиз­мов к антибиотику.
    По степени чувствительности к антибиотикам микроорганизмы делят натри группы:
    1. Чувствительные — микроорганизмы, рост которых подавляется при МПК, coothciствующей концентрации препарата в сыворотке крови при применении обычных те­рапевтических доз препарата.
    2. Умеренно устойчивые — такие штаммы микроорганизмов, МПК которых достиг’84 гТСЯ при назначениимаксимальных терапевтических доз антибиотика.
    3. Устойчивые микроорганизмы, рост которых не подавляется максимально допусти­мыми дозами лекарственных препаратов.
    Такое определение степени чувствительности к антибиотикам возможно при приме нении количественных методов разведения в жидких питательных средах. Тем не менее существует определенная корреляция между значениями МПК и размером зон задеря ки роста микробов при применении бумажных дисков с антибиотиками, что дает опт вапие использовать этот простой и удобный способ для ориентировочного количествен ггого описания степени чувствительности.
    Следует все же помнить, что результаты определения чувствительности к апгибпо тикам in vitro не всегда соответствуют реальной клинической ситуации, особенно при смешанной инфекции, снижении иммунологической реактивности организма, затрудие-ииях, возникающих при попытке выделить культуру основного возбудителя и

  15. Алина кот Ответить

    Мокрота – это патологический продукт, выделяемый больным при различных заболеваниях дыхательной системы. Исследование мокроты позволяет определить степень выраженности патологического процесса и его остроту.
    Мокрота может исследоваться:
    1. Общеклиническими методами исследования.
    2. Цитологическими методами.
    3. Бактериологическими методами.
    Общеклинические методы исследования
    Собирание мокроты и ее хранение.
    Мокроту собирают в чистую сухую посуду. Перед откашливанием больной должен прополоскать рот и зев водой и при сплевывании мокроты в баночку тщательно избегать загрязнения наружных стенок сосуда.
    Исследованию подвергается мокрота, выделяемая в утренние часы, либо полученная за сутки, но сохраняемая до начала исследования в холодном месте.
    Макроскопическое исследование
    Общие свойства:
    а) суточное количество.
    Объем выделенной мокроты определяют в стеклянной градуированной посуде. При абсцессе, гангрене, бронхоэктатической болезни выделяется большое количество мокроты (200-300 мл и более за сутки). При острых бронхитах за сутки выделяется 2-5 мл мокроты;
    б) запах.
    Гнилостный, гангренозный запах свежевыделенной и правильно собранной мокроты отмечается при абсцессе, гангрене и распаде злокачественной опухоли легкого. При других заболеваниях мокрота обычно запаха не имеет;
    в) цвет.
    В зависимости от характера мокроты или примеси вдыхаемой пыли изменяется цвет мокроты. Серый или серовато-белый цвет характерен для слизистой мокроты, желтовато-серый – при гнойно-слизистой мокроте. Цвет мокроты зависит от стадии, формы и степени поражения легких;
    г) характер мокроты зависит от состава мокроты. Она может включать слизь, гной, серозную жидкость, фибрин;
    д) консистенция.
    Мокрота может быть тягучей при примеси слизи, студенистой при наличии фибрина, умеренно вязкой или вязкой при примеси гноя, жидкой при наличии в ней серозной жидкости;
    е) форма.
    Обычно мокрота имеет комковатую или клочковатую форму, а при большом содержании слепков из альвеол с альвеолярными клетками – зернистую.
    Микроскопические исследования
    Доставленную мокроту выливают в чашку Петри и узким шпателем и иглой на черном и белом фоне отбирают из чашки Петри на предметное стекло все выделяющиеся по форме, цвету или плотности частицы мокроты.
    Отобранный на предметное стекло материал покрывают покровным стеклом (24X24). Количество мокроты, взятой для исследования, должно быть небольшим, чтобы она не выступала из-под покрывного стекла. Приготовленный пативный препарат исследуют под малым (объектив 8х, окуляр 7х), а затем под большим (объектив 40х, окуляр 7х) увеличением микроскопа.
    Окрашивание препаратов осуществляется методами Панненгейма, методами Романовского, методами Панаииколау, методами по Граму, методами Циля – Нильсена.
    Окраска по Панненгейму
    Сухие нефиксированные мазки помещают в контейнер и опускают в кювету с раствором красителя – фиксатора Май-Грюнвальда на 5 минут, после чего контейнер с мазками, ополаскивают в кювете с дистиллированной водой и помещают в кювету с рабочим раствором красителя Романовского на 8-15 минут. Затем смывают краситель водопроводной водой и высушивают мазки.
    Окраска по Граму
    Высушенный на воздухе препарат фиксируют – медленно проводят 3-4 раза над пламенем горелки. Затем на фиксированный препарат, покрытый полоской фильтровальной бумаги, на 3-5 мин. наливают раствор геициалвиолета. Бумажку удаляют и на 3-5 мин. заливают препарат раствором Люголя. Далее раствор Люголя сливают и промывают спиртом, докрашивают рабочим раствором Фуксина. После этого препарат промывают водой, высушивают на воздухе и исследуют под микроскопом с иммерсионной системой.
    Бактерии, окрасившиеся при окраске по Граму в синий цвет называются грамположительными, в красный – грамотрицательными.
    Окраска по Цилю-Нильсену
    Высушенный на воздухе и фиксированный над пламенем горелки препарат мокроты покрывают кусочком фильтровальной бумаги и заливают карболовым фуксином. Затем подогревают препарат над пламенем горелки до появления паров, охлаждают и снова подогревают (три раза), после чего дают остыть и удаляют фильтровальную бумагу. Далее препарат опускают в солянокислый спирт для обесцвечивания до полного отхождения краски и промывают водой, докрашивают метиленовым синим или пикриновой кислотой (0,25-0,5%-ным раствором) в течение 20-30 секунд. Затем препарат промывают водой, высушивают на воздухе и микроскопируют с иммерсионной системой, что позволит выявить бациллы Коха, поставить туберкулез бактериоскопически.
    Препараты мокроты, окрашенные методами Панненгейма, Романовского, позволяют определить морфологические элементы, находящиеся в мокроте, что дает возможность идентифицировать бронхиты, пневмонии, абсцессы, бронхоэктатическую болезнь в зависимости от стадии воспаления и активности процесса.
    Препараты мокроты, окрашенные методами Грама, позволяют идентифицировать бактериальную флору, а также необходимы при постановке актииомикоза.
    Основые морфологические элементы мокроты
    1. Окраска по Панненгейму и по Романовскому позволяет идентифицировать гранулоциты. Подсчет их ведется на 100 лейкоцитов (как в мазке крови). Большой процент эозинофильных гранулоцитов характерен для бронхиальной астмы и при эхинококкозе легких.
    2. Эритроциты легочного происхождения наиболее часто встречаются при туберкулезе, актииомикозе, бронхоэктазии, раке и сифилисе.
    3. Эпителий мокроты подразделяется на альвеолярный, цилиндрический и плоский.
    4. Большое количество эластических волокон, содержащихся в мокроте, свидетельствует о воспалении или злокачественном новообразовании.
    5. Фибрин также свидетельствует о воспалительном процессе.
    6. Спирали Куршмана встречаются при различных бронхитах и особенно бронхиальной астме.
    7. Кристаллы Шарко-Лейдена вместе с эозинофилами свидетельствуют о бронхиальной астме.
    8. Кристаллы гематоидина встречаются при абсцессе, реже при гангрене легкого.
    9. Кристаллы холестерина выявляются с большей частотой при новообразованиях, абсцессе, эхинококкозе.
    10. Рисовидные зерна образуются в старых туберкулезных кавернах.
    Среди морфологических элементов выделяют Тетраду Эрлиха, характерную для туберкулезного процесса, состоящую из четырех элементов:
    а) обызвествленных эластических волокон,
    б) обызвествленных частиц,
    в) кристаллов холестерина,
    г) туберкулезных бацилл – при туберкулезе.
    11. Альвеолярные клетки встречаются в мокроте исключительно при воспалительных процессах в легком.
    12. Пробка Дитриха – это нейтральный жир с иглами жирных кислот и детритом; встречается при абсцессах и бронхоэктатической болезни.
    13. Жировые шары и жирнозернистые клетки встречаются при некротических процессах в легких: абсцессе, туберкулезе, актиномикозе, новообразованиях.
    14. Клетки воспаления: гигантские многоядерные клетки, эпителиоидные, гистиоциты.
    15. Клетки Пирогова-Лангханса входят в состав туберкулезной гранулемы.
    16. Опухолевые клетки должны быть обязательно подвержены цитологическому исследованию. Некоторые морфологические элементы мокроты представлены на рис. 34, 35.
    Паразиты в мокроте
    – из отряда цепней (ленточные черви) семейства Taeniidae в мокроте можно обнаружить: крючья, сколексы и остатки стенки пузыря эхинококка (Echinococcus granulosis); а также элементы альвеококка (Alveococcus multicoculaliris);
    – из класса трематод: семейства Paragomidae в легких может паразитировать Paragonimus westermeni, а также Thominx aerophilus, относящийся к семейству трематод.
    Клинические проявления при парагоиимозе и томиксозе напоминают туберкулезный процесс;
    – из класса нематод: наиболее часто встречается в легких личинка Ascaris lumbricoides и личинки апкилостоматид; – из простейших в легких могут встречаться амебы: Entamoeba gingivalis, Entamoeba pulmonalis; жгутиковые – Trichomonas, а также Balantidium coli.
    При бактериологическом исследовании окрашенных препаратов удается идентифицировать грибки, наиболее часто встречающийся лучистый грибок (Actinomyces); бациллы Коха; спирохеты – Spirochaetae vincenti (фузоспирилезиая флора); Spirochaetae costellanii; Spirochaetae interohaemorrhagiae.
    Для дальнейшего идентифицирования бактериальной микрофлоры необходимо бактериологическое исследование.
    Бактериологическому исследованию подвергаются: мокрота, промытые воды бронхов, пунктах инфильтрата или абсцесса легкого.
    Взятие материала: утреннюю мокроту, выделяющуюся во время приступа кашля, собирают в стерильную банку (чашку Петри). Перед откашливанием больной чистит зубы и полощет рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры ротовой полости.
    Материал асептически доставляют в лабораторию. Интервал между взятием материала и его посевом не должен превышать 1-2 часов.
    Посев осуществляется на следующие питательные среды:
    1) 5%-ный кровяной агар,
    2) агар па переваре Хоттипгера,
    3) желточпо-солевой агар,
    4) шоколадный агар,
    5) среда Эндо,
    6) среда Сабуро, Среды обогащения:
    Питательный бульон или 2%-ная иеитоипая вода. Сахарный бульон. Жидкая Сабуро.
    Посев осуществляется количественными или полуколичественными методами в аэробных и анаэробных условиях.
    Наиболее часто воспалительные заболевания легких обусловлены следующей флорой:
    Streptococcus pneumoniae и др.^герпуЬсоссоз aureus и др.? Micrococcus, Neisseria , Haemophilus influenzae, Listeria monocytogenes, Corynebacterium sp.,Klebsiela и др., Pseudomonus aerusinosa и др., Е. Coli,Citrobacter sp.,Profeus sp. и др.,Actinomyces.
    При направленном исследовании, используя специальные среды и методы, могут быть выделены бактериологически Mycobacterium tuberculosis и другие микробактерии, Bacteroides, Micoplasma.
    При подозрении на коклюш и паракоклюш посев производят на среду КУА (казеиново-угольный агар) анаэробно кашлевым или петлевым методами. При этом материал должен доставляться в лабораторию немедленно после его взятия в специальных транспортных термосах (при 37° С).
    При оценке степени микробной обсемененности при количественном методе посева (титрованием) учитывается не только количество выросших колоний, а также их ассоциации.
    1 степень – очень скудный рост (до 10 колоний)
    2 степень – скудный рост (10-25 колоний)
    3 степень – умеренный рост (не менее 50 колоний)
    4 степень – обильный рост (сплошной рост)
    Третья и четвертая степени роста обычно свидетельствуют об этиологической роли данного микроорганизма, первая и вторая степени – о носительстве или контаминации.
    Совокупность клинических, цитологических и бактериологических методов исследования дает полную клинико-диагностическую картину патологического процесса в легких. Правильный забор, транспортировка, хранение и соблюдение техники исследования позволяют улучшить качество лабораторных видов исследования.

  16. *_*ViTaMiNkA*_* Ответить

    Мокрота – патологический секрет дыхательных путей. При заболеваниях легких производят общий клинический анализ мокроты (исследование физических, химических свойств, микроскопия с оценкой клеточных, волокнистых, кристаллических элементов), бактериоскопическое, бактериологическое исследование с определением чувствительности микрофлоры к антибиотикам.
    Забор материала.
    Мокроту собирают для исследования в чистую сухую прозрачную стеклянную посуду, по мере ее отхождения после откашливания. Забор производится в утренние часы, причем предварительно больной должен прополоскать рот и глотку водой.
    Накопление мокроты за одни или трое суток используется для исследования на микобактерию туберкулеза. В случае необходимости мокроту можно сохранять в прохладном месте, лучше всего в холодильнике.
    Необходимо помнить, что мокрота является заразным материалом, и потому обращаться с ней следует с определенными мерами предосторожности – не пачкать рук и окружающих предметов, производить обеззараживание мокроты и посуды, в которой она находилась в соответствии с правилами дезинфекции.
    Исследование физических свойств мокроты.
    Исследование физических свойств мокроты производят при микроскопическом ее изучении, для чего мокроту помещают в чашку Петри и рассматривают попеременно на светлом и темном фоне. Оценивают количества мокроты, ее характер, цвет, консистенцию, слоистость, запах и наличие различных примесей.

  20. VideoAnswer Ответить

Добавить ответ

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *