Условный нормоценоз что это такое у женщин?

15 ответов на вопрос “Условный нормоценоз что это такое у женщин?”

  1. LALKA2000 Ответить

    Состав микрофлоры влагалища уникален для каждой женщины. Это обусловлено индивидуальными особенностями самого организма, гормональным статусом, состоянием здоровья, регулярностью половой жизни и даже вкусовыми пристрастиями. Но вне зависимости от того, насколько уникален и индивидуален каждый женский организм, в медицинской практике существует понятие соответствия состава микрофлоры норме. Его можно представить в виде диапазона показателей с определенными рамками, в пределах которых микрофлора с различными количественными и качественными характеристиками может считаться нормальной.

    Понятие нормоценоза

    Здоровая микрофлора влагалища представлена большим разнообразием микроорганизмов, которые присутствуют в ней в том или ином соотношении друг к другу. Нормоценоз – доминирование лактобактерий, отсутствие грамотрицательной микрофлоры, спор, мицелия, псевдогифов, наличие единичных лейкоцитов и единичных “чистых” эпителиальных клеток соответственно фазе менструального цикла. Типичное состояние нормального биотопа влагалища.  Это и есть нормальный состав микрофлоры, который обеспечивает защитные функции слизистой оболочки влагалища. Промежуточный тип – умеренное или незначительное количество лактобактерий, наличие грамположительных кокков, грамотрицательных палочек. Обнаруживаются лейкоциты, моноциты, макрофаги, эпителиальные клетки. Часто наблюдается у здоровых женщин, редко сопровождается субъективными жалобами и клиническими проявлениями.
    Дисбиоз влагалища – незначительное количество или полное отсутствие лактобактерий, обильная полиморфная грамотрицательная и грамположительная палочковая и кокковая микрофлоры; наличие “ключевых” клеток. Количество лейкоцитов вариабильно, отсутствие или незавершенность фагоцитоза. Полимикробная картина мазка.

    Как определяется нарушение нормоценоза

    Для определения количественного и качественного состава микрофлоры необходимо проведение лабораторных исследований. Для этого на приеме гинеколога у женщины проводится забор образца выделений из влагалища, уретры, цервикального канала (шейки матки). Это абсолютно безболезненные процедуры, которые выполняются амбулаторно – непосредственно в кабинете врача.
    Наиболее простой способ определить состав микрофлоры – микроскопическое исследование. Образец, взятый у женщины, помещается в специальную питательную среду, в которой присутствующие в биоматериале культуры быстро размножаются. После этого проводится исследование под микроскопом, а также подсчет количественного и процентного соотношения всех представителей микрофлоры, выявленных в образце.
    Кроме этого используется метод ПЦР (полимеразной цепной реакции), в процессе которого выявляются генетические «следы» микроорганизмов, не обнаруживаемых визуально. Если мазок на микрофлору является обычной частью планового гинекологического обследования, то ПЦР-диагностика назначается при наличии признаков нарушения со стороны мочеполовой системы. К таким симптомам относятся:
    изменения цвета, запаха, количества и/или консистенции выделений из влагалища;
    неприятные ощущения в области наружных половых органов и слизистой оболочки вульвы (зуд, жжение, боль);
    наличие высыпаний в области наружных половых органов;
    нарушения мочеиспускания (слишком частое, болезненное, затрудненное и пр.);
    боль и дискомфорт в нижней части живота и пояснице;
    нарушения менструального цикла.
    При обнаружении хотя бы одного из указанных признаков следует обратиться к гинекологу, чтобы как можно раньше определить причину этого состояния. После выявления микроорганизма,  специалист назначит подходящую схему лечения. При необходимости может быть назначен дополнительный анализ для определения чувствительности конкретного патогена к антибактериальным препаратам.

    Что делать, если микрофлора нарушена

    Особое место в тактике лечения отводится нормализации микрофлоры и ее приведению к статусу нормоценоза. С этой целью специалист может назначить пробиотические лекарственные средства, например, современный препарат Лактонорм®. Его состав представлен живыми культурами лактобактерий – особых микроорганизмов, обеспечивающих равновесие интимной микрофлоры.
    Препарат не содержит консервантов – живые ацидофильные лактобактерии сохраняются в нем за счет специальных условий хранения (в отличие от порошковых лекарственных средств Лактонорм® хранится в холодильнике). Входящая в состав препарата лактоза является для лактобактерий естественной питательной средой, что способствует их приживлению и росту на слизистые влагалища. Благодаря отсутствию в Лактонорм® гормональных веществ, искусственных красителей и парабенов он может использоваться женщинами во время беременности – периода, для которого нарушение микрофлоры является частым и потенциально опасным состоянием.

  2. Популярный Ютубер Ответить

    В настоящее время диагностика БВ основывается на данных клинического обследования и результатах лабораторных методов диагностики [40, 51, 53, 59].
    Предварительный диагноз БВ может быть поставлен непосредственно во время гинекологического осмотра. Основными клиническими проявлениями БВ являются гомогенные выделения из влагалища, пенистые, слегка тягучие, белого или серого цвета с неприятным запахом. Длительность существования этих симптомов может исчисляться годами. При длительно текущем процессе выделения приобретают желтовато-зеленоватую окраску, становятся более густыми, нередко напоминают творожистую массу, равномерно распределяются по стенкам влагалища без выраженного его воспаления. Количество белей варьирует от умеренных до весьма обильных. В среднем количество белей составляет 20 мл в сутки.
    Во время проведения гинекологического осмотра необходимо помнить о возможном бессимптомном течении БВ. В этом случае у пациенток полностью отсутствуют клинические проявления БВ и диагноз может быть поставлен только по результатам лабораторных исследований.
    Дифференциальный диагноз проводится с кандидозом и трихомониазом. При кандидозе, как правило, отмечают сильную гиперемию вульвы и влагалища, а при трихомониазе – поверхностную очаговую гиперемию вульвы и ярко-красные пятна на слизистых оболочках шейки матки и стенках влагалища.
    Во время гинекологического осмотра проводят дополнительные диагностические тесты – критерии Амсела (Amsel). Наличие трех из четырех перечисленных признаков позволяет поставить диагноз БВ непосредственно во время гинекологического осмотра.
    Критерии Амсела:
    – специфический характер влагалищных выделений;
    – наличие в мазке из влагалища «ключевых клеток» (микроскопическое исследование нативного мазка из влагалища);
    – рН влагалищных выделений более 4,5 (рН-метрия);
    – положительный аминотест (тест с 10% раствором КОН).
    pH-метрия и аминотест с 10%-м раствором КОН относятся к так называемым скрининговым методам диагностики.

    Определение рН вагинального отделяемого

    В норме водородный показатель вагинального отделяемого, характеризующий его кислотность, составляет 3,8-4,5.
    В процессе метаболизма лактобактерий при расщеплении гликогена эпителия влагалища образуется молочная кислота. При нарушении механизма метаболизма лактобактерий происходит их гибель и сдвиг pH влагалищных выделений в сторону щелочной реакции (более 4,5), которая приводит к росту анаэробных бактерий.
    Определение рН вагинального содержимого проводится с помощью различных модификаций рН-метров или с использованием универсальной индикаторной бумаги (лакмусовая бумажка), которые вводятся во влагалище или помещаются непосредственно в каплю влагалищных выделений, нанесенных на предметное стекло.
    Во избежание ошибок в клиническом диагнозе обследование на БВ не проводят во время менструации, в течение 2-3 дней после полового сношения (сперма может изменять рН вагинального отделяемого), а также на фоне использования антибактериальных и гормональных препаратов. Чувствительность и специфичность этого метода составляют 89 и 85% соответственно [67-69].

    Аминотест

    Вагинальное содержимое в 50% случаев имеет запах «тухлой рыбы», который является результатом выработки диаминов в процессе реакции декарбоксилирования аминокислот облигатными анаэробными бактериями. Соли этих соединений превращаются в летучие амины при щелочном значении рН.
    Запах «тухлой рыбы», вызываемый алкилированием влагалищного содержимого, свидетельствует о наличии летучих аминов, таких как кадаверин, триметиламин, путресцин, тирамин, изобутиламин, являющихся продуктами жизнедеятельности неспорообразующих анаэробных бактерий. Вместе с тем, G. vaginalis, выделяемые при БВ, не продуцируют эти соединения. Поэтому в случае полного доминирования G. vaginalis в составе вагинального микробиоценоза аминотест будет отрицательным.
    При проведении аминотеста в каплю вагинального содержимого, нанесенного на хорошо обезжиренное предметное стекло, вносится равное количество 10% раствора КОН. При положительном аминотесте определяется запах «тухлой рыбы».
    Тест на наличие специфического запаха субъективен, поскольку его результаты подвержены искажению в связи с индивидуальными особенностями личного восприятия процедуры непосредственным исполнителем. Тем не менее чувствительность и специфичность этого диагностического теста составляют 79 и 97% соответственно [67].

    Микроскопическое исследование

    Микроскопическое исследование с целью выявления «ключевых клеток» проводится непосредственно во время гинекологического осмотра. Мазок из влагалища наносится на хорошо обезжиренное предметное стекло, равномерно распределяется тонким слоем на его поверхности, накрывается покровным стеклом и просматривается с использованием световой микроскопии при увеличении в 400 раз. Чувствительность микроскопического метода диагностики составляет 93%, а специфичность – 70%.
    Кроме диагностики БВ микроскопический метод имеет важное диагностическое значение в выявлении относительно редких в репродуктивном возрасте женщины состояний вагинальной микроэкологии: цитолитического вагиноза, промежуточной формы микробиоценоза, вагинальной эпителиальной атрофии (последняя характерна для менопаузы).
    Формирование «ключевых клеток» происходит в случае увеличения колонизации G. vaginalis и последующей их адгезии на клетки вагинального эпителия. «Ключевые клетки» представляют собой отторгшиеся от эпителиальной выстилки интактные или литически измененные клетки, колонизированные G. vaginalis. G. vaginalis покрывают всю поверхность эпителиальных клеток в виде облака или вуали, а в наиболее клинически выраженных случаях заполняют собой все межклеточное пространство.
    Однако следует помнить, что выявление «ключевых клеток» при микроскопическом исследовании влажного неокрашенного мазка увеличивает вероятность получения ложноположительного результата, так как часто «ложноключевые клетки» (эпителиальные клетки с адгезированными на них лактобактериями) отождествляют с истинными, что ведет к гипердиагностике БВ.
    Более достоверную информацию можно получить при микроскопическом исследовании вагинальных мазков, окрашенных по методу Грама, когда «ключевые клетки» легко дифференцировать с «ложноключевыми клетками». Кроме того, отношение микроорганизмов к окрашиванию по Граму имеет большое диагностическое значение.
    Окраска по Граму относится к сложному способу окраски. При сложных способах окраски на мазок воздействуют двумя красителями, из которых один является основным, а другой – дополнительным. Кроме красящих веществ при сложных способах окраски используют различные обесцвечивающие вещества: спирт, кислоты и т.д.
    Особенностью окраски по Граму является неодинаковое отношение микроорганизмов к красителям трифенилметановой группы: генциановому, метиленовому или кристаллическому фиолетовому. Микроорганизмы, входящие в группу грамположительных, например стафилококки, стрептококки, дают прочное соединение с указанными красителями и йодом. Окрашенные микроорганизмы не обесцвечиваются при воздействии на них спиртом, вследствие чего при дополнительной окраске фуксином грамположительные микроорганизмы не изменяют первоначально принятый фиолетовый цвет. Грамотрицательные микроорганизмы (бактероиды, фузобактерии и др.) образуют с генциановым кристаллическим или метиленовым фиолетовым и йодом легко разрушающиеся под действием спирта соединения, в результате чего они обесцвечиваются и затем окрашиваются фуксином, приобретая красный цвет.
    Мазки исследуют с помощью световой микроскопии при увеличении в 1000 раз с использованием масляной иммерсии. Качественная оценка микрофлоры влагалища включает дифференциацию всех морфотипов по их тинкториальным свойствам и морфологическим признакам. Различают морфотипы лактобактерий, фузобактерий, бактероидов, мобилункусов, лептотрихий, вейлонелл, гарднерелл, а также грамположительных кокков, колиформных палочек, дрожжевых грибов. В мазке могут быть обнаружены трихомонады и другие паразиты.
    Оценку микроскопической картины проводят по критериям Шпигеля (Spigel) в модификации Ньюжента (Nagent) (табл. 4).

    При просмотре не менее 10 полей зрения подсчитывают среднее количество бактерий, принадлежащих к разным морфотипам. Каждому количеству бактерий определенного морфотипа присваивается определенный балл. Далее баллы суммируют и анализируют с использованием специальной стандартной шкалы:
    – сумма баллов 0-3 соответствует нормоценозу;
    – сумма баллов 4-6 соответствует промежуточной форме;
    – сумма баллов более 7 соответствует БВ.
    Микроскопическое исследование мазков из влагалища позволяет оценить:
    – состояние вагинального эпителия (преобладают клетки поверхностного, промежуточного или парабазального слоя);
    – исключить или подтвердить наличие «ключевых клеток» (поверхностные эпителиальные клетки, густо покрытые адгезированными на них мелкими грамвариабельными палочками, скрывающими границы клетки) или «ложноключевых клеток» (повышенная адгезия на эпителиальных клетках грамположительных палочек, чаще всего лактобактерий);
    – лейкоцитарную реакцию (наличие, степень выраженности, проявления фагоцитоза, его завершенность);
    – состав микрофлоры (количественная и качественная оценка по морфотипам и тинкториальным свойствам).
    В нашей стране с учетом современных достижений клинической бактериологии и знаний инфекционной патологии женских половых органов для оценки микроскопической картины вагинального мазка в 1994 г. Е.Ф. Кира была разработана оригинальная классификация микроскопической характеристики биоценоза влагалища, в которой представлена микроскопическая характеристика четырех типов микробиоценоза влагалища и соответствующие каждому типу нозологические формы.
    Нормоценоз – типичное состояние нормального биотопа влагалища
    (рис. 1).
    Рисунок 1. Нормоценоз (микроскопия мазка, окрашенного по Граму).
    Вагинальный эпителий представлен клетками поверхностных слоев, реже встречаются клетки промежуточного слоя (соотношение может меняться в зависимости от фазы менструального цикла, у беременных много промежуточных клеток); «ключевые» клетки отсутствуют, иногда встречают «ложноключевые» клетки; лейкоцитарная реакция отсутствует или слабо выражена – единичные лейкоциты в поле зрения; общее количество микроорганизмов умеренное или большое; доминирующий морфотип – лактобактерии, другие морфотипы либо отсутствуют, либо их количество исчисляется единичными микробными клетками в редких полях зрения.
    Промежуточный тип
    Часто наблюдается у здоровых женщин репродуктивного возраста, редко сопровождается субъективными жалобами и клиническими проявлениями.
    Вагинальный эпителий представлен поверхностными клетками; «ключевые клетки» единичные; количество лейкоцитов не более 10 в поле зрения; общее количество микроорганизмов умеренное или большое; доминируют морфотипы строгих анаэробов и гарднереллы в сочетании с умеренно сниженным титром лактобактерий.
    Дисбиоз влагалища – бактериальный вагиноз
    (рис. 2).
    Рисунок 2. Бактериальный вагиноз (микроскопия мазка, окрашенного по Граму).
    Вагинальный эпителий представлен клетками поверхностных слоев, редко встречаются промежуточные клетки, часто – «ключевые» клетки (рис 3.);Рисунок 3. «Ключевые» клетки (микроскопия мазка, окрашенного по Граму). лейкоцитарная реакция, как правило, отсутствует; общее количество микроорганизмов массивное, реже – большое; преобладают морфотипы строгих анаэробов и гарднереллы, лактоморфотипы отсутствуют или определяются как единичные не во всех полях зрения.
    Эпителиальные клетки в подавляющем большинстве подвергнуты цитолизу; в мазке преобладают элементы деструкции клеток – детрит, обнаженные ядра поверхностных и промежуточных клеток; лейкоциты отсутствуют или их количество не превышает 10 в поле зрения; микрофлора в большом количестве, представлена морфотипами типичных лактобактерий (рис. 4).Рисунок 4. Цитолитический вагиноз (микроскопия мазка, окрашенного по Граму).
    Вагинит
    (рис. 5)
    Рисунок 5. Кандидозный вагинит (микроскопия мазка, окрашенного по Граму).
    Вагинальный эпителий преимущественно поверхностных слоев, но может быть много промежуточных и даже парабазальных клеток (пропорционально степени тяжести клинического течения заболевания); лейкоцитарная реакция от умеренной (10-15 лейкоцитов в поле зрения) до резко выраженной (30-50 и более лейкоцитов в поле зрения); общее количество микроорганизмов умеренное или большое; доминируют морфотипы лактобактерий, присутствуют дрожжевые клетки, фрагменты псевдомицелия с бластоспорами (рис. 6).Рисунок 6. Сочетание бактериального вагиноза и кандидозного вагинита (микроскопия мазка, окрашенного по Граму).
    Вагинальный эпителий преимущественно поверхностных слоев, присутствуют «ключевые» эпителиальные клетки; умеренная или выраженная лейкоцитарная реакция; общее количество микроорганизмов массивное или большое; доминируют морфотипы строгих анаэробов и гарднереллы, присутствуют дрожжевые клетки и/или фрагменты псевдомицелия гриба; лактоморфотипы отсутствуют или видны единичные в поле зрения.
    Неспецифический вагинит
    (рис.7)
    Рисунок 7. Неспецифический вагинит (микроскопия мазка, окрашенного по Граму).
    Вагинальный эпителий представлен поверхностными и промежуточными клетками, при выраженном воспалительном процессе встречаются парабазальные клетки; наблюдается в разной степени лейкоцитарная реакция (более 10 лейкоцитов в поле зрения); общее количество микроорганизмов умеренное; лактобактерии отсутствуют или их количество резко снижено (до единичных в поле зрения); преобладают морфотипы условно-патогенных микроорганизмов – колиформные палочки или грамположительные кокки.
    При обнаружении гонококков, трихомонад, мицелия, псевдогиф, спор выставляется соответствующий этиологический диагноз – гонорея, трихомониаз, микотический (грибковый) вагинит.
    Вагинальная эпителиальная атрофия
    (рис. 8).
    Рисунок 8. Вагинальная эпителиальная атрофия (микроскопия мазка, окрашенного по Граму).
    В зависимости от степени атрофии слизистой оболочки влагалища эпителий представлен различным соотношением числа промежуточных и парабазальных клеток, по мере нарастания атрофии увеличивается число парабазальных и базальных клеток; количество лейкоцитов обычно не превышает 10 в поле зрения; микрофлора практически отсутствует; можно встретить единичные лактоморфотипы или морфотипы условно-патогенных микроорганизмов в редких полях зрения.

    Бактериологическое исследование

    Бактериологический метод диагностики до настоящего времени остается золотым стандартом при изучении микроценозов различных биотопов макроорганизма и в диагностике бактериальных инфекций.
    Широкий спектр микроорганизмов, играющих роль в формировании микробиоценоза влагалища, а также в возникновении инфекционных процессов в нем требует проведения дифференциации и идентификации микроорганизмов. Определение родовой, видовой и типовой их принадлежности является наиболее трудоемким и ответственным этапом бактериологического исследования, которое основывается, в первую очередь, на основании изучения целого комплекса свойств микроорганизмов: морфологических, тинкториальных, культуральных, ферментативных и антигенных. При идентификации микроорганизмов работают только с чистой культурой микроорганизма, поскольку присутствие посторонних микроорганизмов может исказить результаты исследования и послужить поводом для ошибочного заключения. Бактериологическое исследование проводится в несколько этапов, требует не только приготовления большого количества питательных сред, реактивов, диагностикумов, особых условий культивирования, но и наличия специально подготовленных врачей-бактериологов, что делает этот метод исследования весьма дорогостоящим.
    Важным фактором, значительно влияющим на успех бактериологической диагностики БВ, является корректный способ взятия и транспортировки биологического материала. Так, взятие биологического материала должно всегда осуществляться до начала лечения биотерапевтическими или антибактериальными препаратами или не ранее чем через 10 дней после окончания их приема, а также до начала проведения других местных терапевтических вмешательств. Накануне взятия биологического материала пациентка не должна иметь половую связь.
    Для сохранения бактерий в жизнеспособном состоянии in vitro и предотвращения их гибели во время транспортировки биологического материала исследуемый материал транспортируется в специальных транспортных средах в максимально короткие сроки. В настоящее время бактериологи располагают большим арсеналом коммерческих универсальных транспортных сред, которые способны сохранять в жизнеспособном состоянии весь спектр культивируемых микроорганизмов.
    В зависимости от цели исследования, которая определяется в необходимости проведения точной количественной оценки микрофлоры или возможностью ограничиться ориентировочным (полуколичественным) методом, вагинальное отделяемое высевается на питательные среды двумя методами:
    1) взятие вагинального отделяемого производится с помощью калиброванной петли диаметром 3 мм или ложечки Фолькмана, затем биологический материал погружается в 1 мл жидкой транспортной среды, далее готовятся серийные разведения из расчета 10:1 (объем/масса) и затем по 0,1 мл высевают на различные селективные питательные среды;
    2) взятие вагинального отделяемого производится микробиологическим тампоном и засевается на среду обогащения (тиогликолевая среда) и на половину чашки Петри с селективной питательной средой с последующим рассевом методом истощения.
    Степень роста бактериальной флоры определяется в первом случае в пересчете на 1 мл вагинального отделяемого (в КОЕ/мл), а во втором случае, при полуколичественной оценке используются четыре уровня (градации) микробного обсеменения:
    – со среды обогащения, при росте бактериальной флоры только на жидкой питательной среде;
    – скудный рост, при росте бактериальной флоры на плотной питательной среде в количестве до 10 колоний микроорганизмов одного вида;
    – умеренный рост, при росте бактериальной флоры на плотной питательной среде в количестве от 10 до 100 колоний микроорганизмов одного вида;
    – обильный рост, при росте бактериальной флоры на плотной питательной среде в количестве более 100 колоний микроорганизмов одного вида.
    Несмотря на его высокую стоимость и сложность проведения, бактериологическое исследование остается наиболее достоверным этапом в диагностике бактериальных инфекций. Кроме того, этот метод на сегодняшний день остается единственным в части изучения антибиотикочувствительности бактериальной флоры, что необходимо при подборе адекватной антибактериальной терапии при бактериальных инфекциях, вызванных антибиотикорезистентными штаммами [40, 52, 53].
    При БВ проведение бактериологического исследования ввиду его длительности и высокой стоимости нецелесообразно и экономически не выгодно. Поскольку в большинстве случаев при лечении БВ назначаются препараты нитроимидазольного ряда (метронидазол, тинидазол и т.д.), к которым у анаэробной микрофлоры не развивается резистентности, нет необходимости в определении антибиотикочувствительности, которая может быть выполнена только бактериологическим методом. В данном случае возможно использование комбинации методов лабораторной диагностики, выполнение которых возможно в более короткие сроки, и их суммарная стоимость гораздо ниже, чем у бактериологического метода, а чувствительность и специфичность превышают его показатели.

    Молекулярно-биологические методы диагностики БВ

    Долгое время применение молекулярно-биологических методов, в частности метода ПЦР, для диагностики БВ многими специалистами воспринималось скептически, несмотря на то что для диагностики других инфекционных заболеваний они постепенно вытесняли микроскопический, иммунологический и даже бактериологический методы. Высокая аналитическая чувствительность молекулярно-биологических методов, столь важная характеристика для выявления патогенных микроорганизмов, затрудняет клиническую интерпретацию результатов при выявлении условно-патогенных микроорганизмов, которые в норме в небольших количествах могут присутствовать в урогенитальном тракте человека. Даже искусственное занижение чувствительности ПЦР-теста, позволяющее отсечь из рассмотрения случаи с низкой концентрацией условно-патогенных микроорганизмов, не повышает его информативности, поскольку при БВ значение имеет не просто абсолютное повышение количества анаэробной и факультативно-анаэробной флоры, а преобладание ее по отношению к количеству лактобактерий. Поэтому применяемый в клинической лабораторной диагностике тест на основе ПЦР для качественного выявления G. vaginalis нельзя рассматривать в качестве теста для диагностики БВ и тем более опираться на его результаты при принятии решения о назначении лечения. С появлением метода ПЦР в реальном времени, возможности молекулярно-биологической диагностики инфекций, вызванных условно-патогенной флорой, и в частности БВ, значительно расширились. Метод позволяет проводить количественную оценку ДНК микроорганизмов, а также выявлять сразу несколько мишеней в одной реакции (мультиплексная ПЦР в реальном времени). На основе такой модификации метода ПЦР было предложено несколько вариантов диагностики БВ, в основе которых лежит количественное определение G. vaginalis и A. vaginae и которые в комбинации имеют высокое предсказательное значение для БВ [70-73]. Кроме того, A. vaginae является не только высокоспецифическим маркером БВ, но обладает видовой устойчивостью к метронидазолу, и его выявление требует корректирования протокола лечения пациентов [74-76]. В отечественной практике был предложен метод на основе ПЦР в реальном времени, позволяющий определять не только количество G. vaginalis и A. vaginae, но и выявлять Lactobacillus spp, а также общую бактериальную массу в качестве маркера качества получения материала для исследования [77]. На основе значений определяемых концентраций были установлены их соотношения, соответствующие состояниям: «бактериальный вагиноз», «промежуточное состояние микрофлоры», «дисбиоз неустановленной этиологии», а также состояние «нормоценоз».

    Комплексная лабораторная диагностика бактериального вагиноза

    В настоящее время клиническая практика располагает достаточно большим перечнем методов лабораторной диагностики, позволяющим оценить в той или иной мере состояние микроэкологии влагалищного биотопа. Но, к сожалению, ни один из этих методов не позволяет достоверно поставить диагноз БВ.
    Скрининговые методы БВ (определение рН вагинального отделяемого и аминотест) весьма субъективны.
    Микроскопическое исследование вагинального отделяемого позволяет оценить состояние слизистой влагалища, исключить воспалительный процесс и наличие «ключевых клеток», но, к сожалению, не дает возможности в полном объеме оценить качественные и количественные характеристики условно-патогенной бактериальной флоры, прежде всего микроаэрофильной – G. vaginalis, M. hominis, U. urealyticum. Кроме того, при проведении микроскопического исследования не исключены проблемы, связанные с гипердиагностикой, в случае определения «ложноключевых клеток». Хотя бактериологическое исследование и позволяет получить наибольшую информацию о количественных и качественных взаимоотношениях микрофлоры во влагалищном биотопе, но, к сожалению, не дает ответа на самый главный вопрос – воспаление есть или нет? Кроме того, даже при проведении этого метода исследования невозможно в полном объеме оценить состояние микрофлоры влагалища из-за наличия в ее составе некультивируемых и трудно культивируемых микроорганизмов.
    Появление в клинической практике молекулярно-биологических методов диагностики до некоторой степени расширило наше представление о микробиоценозе влагалища. Использование этих методов позволило верифицировать микроорганизмы непосредственно в вагинальном отделяемом, минуя такие сложные этапы бактериологического исследования, как культивирование и выделение чистой культуры. Кроме того, молекулярно-биологические методы диагностики позволили решить самую большую проблему бактериологического метода – быструю и качественную идентификацию анаэробных и микроаэрофильных микроорганизмов непосредственно в биологическом материале. Для проведения этих методов диагностики не требуется наличия специальных транспортных сред и создания особых условий хранения биологического материала. Кроме того, время проведения молекулярно-биологических методов сопоставимо по скорости с микроскопическим исследованием и составляет 4,5-5 ч. Единственным недостатком этих методов при диагностике БВ является невозможность при их проведении получения информации о состоянии слизистой влагалища и наличии или отсутствии воспалительной реакции в нем.
    В связи с этим с целью совершенствования диагностики БВ, получения наибольшей информации о состоянии слизистой влагалища и его микрофлоры, сокращения сроков проведения исследования и его стоимости необходимо использование комбинации методов лабораторной диагностики, таких как микроскопическое исследование и молекулярно-биологические методы. В этом случае при проведении микроскопического исследования мы получаем информацию о состоянии слизистой влагалища, наличии или отсутствии «ключевых клеток» и воспалительного процесса, при проведении молекулярно-биологических методов – соответственно информацию о качественных и количественных характеристиках анаэробной и микроаэрофильной бактериальной микрофлоры (табл. 5).

  3. Thordirne Ответить

    Второй врач назначила другое лечение, а поскольку ей я больше верю (она грамотный и опытный врач, помогла мне во всех ситуациях когда я к ней обращалась) то и лечение я выбрала такое: вагинальные таблетки Флуомизин 6 дней, Гинофлор 6 вагинальных таблеток (можно и 12 если остается дискомфорт).
    Поскольку свой дигноз я уже знала наверняка, а так же знала чем лечится то решила больше не рисковать и приступить к лечению!
    Флуомизин содержит 10 мг деквалиния хлорида.
    Флуомизин НЕ ЯВЛЯЕТСЯ АНТИБИОТИКОМ! В названии ошибка того кто создал первый отзыв по данном препарату!
    ФАРМАКОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА:
    Флуомизин содержит деквалиния хлорид с широким спектром антимикробной активности против многих грамположительных и грамотрицательных бактерий, грибов и простейших (Trichomonas vaginalis). Противомикробное и антисептическое средство используемое в гинекологии
    Важные моменты! Особенности применения
    * При лечении нельзя жить половой жизнью!
    * Рекомендуется ежедневно менять нижнее белье и стирать при температуре не менее 80* (кстати говоря на время лечения я приобрела новые трусики, не стринги! чтобы избежать повторного заражения. Что делать с трусами которые у меня есть еще не придумала. Возможно придумаю как их обработать без кипятка).
    * Флуомизин несовместим с мылом! У кого-то в отзывах даже прочла рекомендацию забыть о мыле на все 6 дней)))) очень смешно… Лично я делаю так – купаюсь к примеру часов в 7 вечера, а таблетку ставлю перед сном (около 10-11), что исключает появление неприятных ощущений!
    ПОКАЗАНИЯ:
    вагинальные инфекции бактериального и грибкового происхождения (например бактериальный вагиноз и кандидоз); трихомониаз; санация перед гинекологическими операциями и родами.
    ПРИМЕНЕНИЕ:
    рекомендуется применять 1 вагинальную таблетку каждый день на протяжении 6 дней. Вагинальную таблетку вводят глубоко во влагалище вечером перед сном. Лучше это сделать лежа на спине, слегка согнув ноги. Во время менструации лечение следует приостановить и продолжить после ее прекращения
    Количество нежелательных выделений и дискомфорта уменьшается через 24–72 часа от начала лечения, НО курс лечения (6 дней) нужно обязательно закончить во избежание рецидива!
    ОСОБЫЕ УКАЗАНИЯ:
    Флуомизин содержит вспомогательные вещества, которые полностью не растворяются. Остатки таблетки иногда можно найти на нижнем белье. На эффективность Флуомизина это не влияет. Иногда при сухости влагалища существует вероятность того, что вагинальная таблетка не растворяется и выделяется из влагалища целой. Как следствие, такое лечение неэффективно. Для предотвращения этого перед введением (при сухости влагалища) таблетку следует увлажнить небольшим количеством воды. Препарат не изменяет цвета белья.
    Флуомизин можно применять в период беременности и кормления грудью.
    Как здесь правильно писали отсутствие “палочки-выручалочки”, при помощи которой можно вводить таблетку очень не удобно! Она действительно очень крохкая и если переусердствовать можно раскрошить. Не помню уже от какого препарата, но у меня осталось приспособление которым очень удобно вводить свечи.

  4. JoJosida Ответить

    Фемофлор 16 – расширенное молекулярно-биологическое исследование качественного и количественного состава микрофлоры мочеполовых путей у женщин, включающее оценку общей бактериальной массы, состояния нормофлоры, определение широкого спектра клинически значимых условно-патогенных микроорганизмов, в том числе микоплазм и уреаплазм, а также грибов рода Candida.
    Исследование информативно только для женщин репродуктивного возраста.
    Синонимы русские
    Исследование биоценоза влагалища методом ПЦР.
    Синонимы английские
    Femoflor 16 Real Time PCR.
    Метод исследования
    Полимеразная цепная реакция в режиме реального времени.
    Какой биоматериал можно использовать для исследования?
    Соскоб урогенитальный.
    Как правильно подготовиться к исследованию?
    Исследование (процедуру взятия урогенитального мазка) рекомендуется производить до менструации или через 2-3 дня после её окончания.
    Общая информация об исследовании
    По данным проекта Human Microbiom Project Национального института здоровья США, установлено, что в организме человека обитает около 10 000 видов микроорганизмов, преимущественными локусами распространения которых являются кожа, кишечник и урогенитальный тракт. Микрофлора мочеполовых путей у женщин в норме представлена преимущественно различными видами бактерий рода Lactobacillus, которые играют большую роль в предотвращении колонизации урогенитального тракта болезнетворными микроорганизмами. Вследствие различных причин может возникать дисбаланс микробиоты мочеполового тракта, выражающийся в нарушении её количественных и качественных характеристик, что в итоге приводит к развитию воспалительного процесса. Рядом исследований показано, что в этиологической структуре мочеполовых инфекций, обусловленных дисбалансом условно-патогенной флоры, в большинстве случаев играет роль ассоциация микроорганизмов и изменения в составе нормофлоры. Клинически такие состояния очень часто характеризуются нечеткой выраженностью симптомов, отсутствием специфических признаков и склонностью к хроническому течению, что обуславливает высокий риск присоединения инфекций, вызванных патогенными микроорганизмами, а также развития осложнений со стороны репродуктивной системы. Это определяет первостепенную роль своевременной и качественной диагностики урогенитальных инфекций, ассоциированных с условно-патогенной микрофлорой. Традиционные лабораторные исследования, проводимые для обнаружения болезнетворных микроорганизмов, которые позволяют определить факт наличия возбудителя, малоинформативны в диагностике заболеваний, вызванных условно-патогенной флорой, так как обнаружение её представителей само по себе не свидетельствует о заболевании. Также необходимо отметить, что условно-патогенная микрофлора, наиболее часто являющаяся причиной воспалительных заболеваний мочеполовых путей у женщин, представлена преимущественно анаэробными микроорганизмами (живущими в условиях отсутствия кислорода). Культивирование таких бактерий является технически очень сложным процессом, требующим специального оборудования, и в настоящее время в большинстве лечебных учреждений затруднено.
    Проблему качественной диагностики урогенитальных инфекций, вызванных условно-патогенной флорой, позволило решить внедрение в практику метода полимеразной цепной реакции с детекцией результатов в режиме реального времени. Методика исследования основана на обнаружении в исследуемом материале генетического материала (ДНК) микроорганизма, его многочисленном копировании и идентификации. Так как количество полученных в конце реакции копий зависит от исходного количества исследуемой ДНК, анализ позволяет определить содержание микроорганизма в биоматериале. Отечественная разработка Фемофлор, основанная на технологии RT-ПЦР, предназначена для исследования биоценоза урогенитального тракта у женщин и позволяет выявлять ДНК условно-патогенных микроорганизмов, ДНК лактобактерий и геномной ДНК человека (в качестве контрольного параметра). Спектр выявляемых показателей позволяет получить комплексное представление о качественных и количественных изменениях состава микрофлоры урогенитального тракта, что во многом определяет адекватную тактику медикаментозной терапии. Разработано несколько вариантов комплектации тестовых систем Фемофлор, в зависимости от спектра выявляемых условно-патогенных микроорганизмов. Фемофлор 16 позволяет определять 25 показателей, включая контроль взятия материала, общую бактериальную массу и 23 группы микроорганизмов:
    Lactobacillus spp. – в большинстве случаев составляют основу нормальной микрофлоры влагалища у женщин репродуктивного возраста;
    Семейство Enterobacteriaceae, Streptococcus spp., Staphylococcus spp. – являются компонентами нормальной флоры урогенитального тракта у женщин, могут быть причиной вагинита;
    Gardnerella vaginalis, Prevotella bivia, Porphyromonas spp. – представители нормальной и транзиторной (Gardnerella vaginalis) флоры, этиологические агенты развития бактериального вагиноза;
    Eubacterium spp. – бактерии этого семейства преимущественно обитают в кишечнике, условно патогенны, могут вызывать развитие бактериального вагиноза;
    Sneathia spp., Leptotrihia spp., Fusobacterium spp. – анаэробные микроорганизмы, с ними может быть ассоциировано развитие бактериального вагиноза;
    Veilonella spp., Megasphaera spp., Dialister spp. – условно-патогенные анаэробные бактерии, участвуют в развитии бактериального вагиноза;
    Lachnobacterium spp. – анаэробные труднокультивируемые бактерии, ассоциированы с развитием бактериального вагиноза;
    Clostridium spp. – представитель нормальной флоры кишечника, в урогенитальном тракте условно-патогенный микроорганизм, может вызывать бактериальный вагиноз;
    Mobiluncus spp., Corynebacterium spp. – анаэробные условно-патогенные микроорганизмы, могут вызывать инфекции урогенитального тракта;
    Peptostreptococcus spp. – анаэробные кокки (шаровидные бактерии), условно-патогенны, могут вызывать бактериальный вагиноз;
    Atopobium vaginae – анаэробный микроорганизм, может приводить к бактериальному вагинозу;
    Mycoplasma hominis, Ureaplasma (urealyticum + parvum) – условные патогены;
    Candida spp. – аэробные грибы, условно-патогенные микроорганизмы;
    Mycoplasma genitalium – патогенный микроорганизм, вызывает уретрит (воспаление мочеиспускательного канала).
    Для чего используется исследование?
    Для оценки качественного и количественного состава микрофлоры урогенитального тракта при наличии клинических проявлений воспаления, плановой подготовке к гинекологическим операциям, обследовании перед планированием беременности, в том числе при использовании вспомогательных репродуктивных технологий.
    Когда назначается исследование?
    При наличии клинических или лабораторных признаков воспалительного процесса урогенитального тракта.
    При планирующихся оперативных вмешательствах на органах малого таза с высоким риском развития инфекционных осложнений.
    Диагностический поиск при наличии отягощенного акушерского анамнеза (невынашивание беременности, перинатальные потери, бесплодие).
    Плановое обследование перед планированием беременности, при подготовке к процедуре экстракорпорального оплодотворения.
    Мониторинг эффективности проводимой терапии, восстановления нормоценоза.
    Что означают результаты?
    КВМ – контроль взятия материала. Необходимым условием качественного ПЦР-исследования считается правильное взятие биоматериала. Показателем адекватности полученного образца является достаточное количество ДНК человека, которая в процессе реакции выделяется из клеток, выстилающих слизистую оболочку и попадающих в пробу при правильном взятии мазка. Показатель КВМ менее 104 свидетельствует о недостоверных результатах ПЦР, в таких случаях рекомендуется повторное взятие биоматериала.
    ОБМ (общая бактериальная масса) – общее количество бактерий, имеющихся в исследуемом образце. Снижение ОБМ ниже пороговых значений свидетельствует о недостаточном заселении данного локуса бактериями, в том числе вследствие антибиотикотерапии или гормональных нарушений.
    Нормальная флора – Lactobacillus spp. – их абсолютное количество в норме практически не отличается от показателя общей бактериальной массы, так как лактобактерии являются ее главной составляющей. Относительный показатель лактобактерий высчитывается автоматически путем вычисления разницы десятичных логарифмов между абсолютным значением лактобактерий и ОБМ (например, для абсолютного показателя ОБМ 107 десятичный логарифм будет равен 7). Снижение относительного показателя лактобактерий отражает дисбаланс урогенитальной микрофлоры.
    Оценка условно-патогенной флоры. Количество аэробных и анаэробных бактерий также оценивается в абсолютных и относительных показателях. Относительный показатель высчитывается по разнице между десятичными логарифмами микроорганизма или их группы и ОБМ. По уровню относительной величины определяется незначительное, умеренное и значительное повышение.
    Оценка микоплазм, уреаплазм и грибов рода Candida проводится только по абсолютному показателю, при превышении определенного порога (103 для Candida, 104 для микоуреаплазм) аппарат фиксирует положительный результат.
    Для более удобной интерпретации результатов исследования используется специальная цветовая маркировка:
    контрольные показатели: белый – соответствие критериям, красный – несоответствие;
    условно-патогенные микроорганизмы и дрожжеподобные грибы: белый – соответствие критериям нормы, желтый – умеренное отклонение, красный – выраженное отклонение от нормы;
    нормальная флора (лактобациллы): зеленый – нормоценоз (соответствие критериям нормы), желтый – умеренный дисбиоз (умеренное отклонение от нормы), красный – выраженный дисбиоз;
    патогенные микроорганизмы: белый – не обнаружены, красный – обнаружены.
    По результатам исследования автоматически дается характеристика состояния микрофлоры: нормоценоз, умеренный или выраженный дисбаланс, который по этиологической структуре может быть анаэробным, аэробным и смешанным.
    ?

  5. Kegas Ответить

    Влагалище покрыто многослойным
    неороговевающим плоским эпителием, который не содержит желез. Процессы
    физиологического созревания клеток слизистой влагалища, их слущивания и
    толщина поверхностного слоя подвержены циклическим изменениям в ответ на
    действие половых гормонов.
    Эпителий влагалища, выполняя защитную функцию, обеспечивает его устойчивость к
    воздействию патогенных агентов (бактерии, вирусы, грибы). Важным
    показателем резистентности вагинального эпителия является количество
    гликогена, который содержится преимущественно в поверхностных клетках.
    Поскольку эти клетки постоянно слущиваются и подвергаются разрушению,
    гликоген освобождается, обеспечивая питательный субстрат для нормальной
    микрофлоры. Количество гликогена в клетках вагинального эпителия
    колеблется у одной и той же женщины на протяжении жизни, а также в
    зависимости от фазы менструального цикла. Максимальное накопление
    гликогена приходится на момент овуляции.
    Влагалищная микрофлора строго индивидуальна и может даже в состоянии нормы
    подвергаться изменениям в различные фазы менструального цикла. Кроме
    того, понятие нормы может быть различным для разных возрастных,
    этнических групп и даже географических зон. В связи с этим врозможны
    варианты нормального микробиоценоза (нормоценоза) влагалища.
    Нормофлора влагалищного биотопа – это определенные виды микроорганизмов способные доминировать над другими и продукты их метаболизма. Они служат факторами ограничения общей популяции бактерий, входящих в состав нормальной микрофлоры (влагалища).
    На состав микрофлоры влагалища, как качественный, так и количественный,
    помимо гормональных изменений на протяжении менструального цикла и жизни
    женщины (пубертат, менопауза, беременность), могут
    оказывать воздействие национальные особенности туалета половых органов,
    степень половой активности, состояние нервной и иммунной систем, а также
    всевозможные способы контрацепции.
    В норме влагалище у новорожденных девочек в первые часы жизни стерильно. К
    концу первых суток после рождения оно колонизируется аэробными и
    факультативно-анаэробными микроорганизмами. Через несколько дней в
    вагинальном эпителии происходит накопление гликогена, который является
    идеальным субстратом роста для лактобактерий и в вагинальной микрофлоре у
    новорожденных девочек начинают преобладать лактобактерии. Гормоны
    яичников, стимулируя рецепторную активность вагинального эпителия также
    способствуют активной адгезии лактобактерий на поверхности вагинального
    эпителия. Лактобактерии, в свою очередь, расщепляют гликоген с
    образованием молочной кислоты. Это приводит к сдвигу рН вагинального
    содержимого в кислую сторону (до 3,8-4,5) и ограничению роста и
    размножения микроорганизмов, чувствительных к кислой среде. В этот
    период вагинальная микрофлора у новорожденных девочек имеет сходство с
    микрофлорой влагалища здоровых взрослых женщин.
    Через три недели после рождения у девочек происходит полное метаболизирование
    материнских эстрогенов. Эпителий становится тонким. Содержание
    гликогена в нем уменьшается. Это приводит к снижению количества
    нормальной микрофлоры, прежде всего лактобактерий, а также к снижению
    уровня органических кислот, которые продуцируются этими бактериями. В
    результате снижения уровня органических кислот происходит повышение рН
    вагинальной среды с 3,8-4,5 до 7,0. В микрофлоре начинают доминировать
    строго анаэробные бактерии.
    Начиная со второго месяца жизни и весь пубертатный период вплоть до активации
    овариальной функции происходит снижение общего количества
    микроорганизмов во влагалище у девочек по сравнению с периодом
    новорожденности.
    В пубертатный период, с момента активации овариальной функции, в
    организме у девушек появляются “собственные”, эндогенные эстрогены. Под
    влиянием этих эстрогенов в клетках вагинального эпителия накапливается
    гликоген и происходит формирование так называемого
    “эстроген-стимулированного эпителия”. На поверхности вагинальных
    эпителиоцитов повышается число рецепторных участков для адгезии
    лактобактерий. Увеличивается толщина эпителиального слоя. С этого
    момента лактобактерии вновь становятся доминирующими микроорганизмами во
    влагалище и в последующем сохраняют это положение на протяжении всего
    репродуктивного периода у женщин. Метаболизм лактобактерий способствует
    стабильному сдвигу рН вагинальной среды в кислую сторону до 3,8-4,5. В
    вагинальной среде повышается окислительно-восстановительный потенциал, и
    это все создает неблагоприятные условия для роста и размножения строго
    анаэробных микроорганизмов.
    У здоровых женщин репродуктивного возраста эстрогены воздействуют на
    вагинальный эпителий в фолликулярную, или пролиферативную фазу
    менструального цикла, а прогестерон в лютеиновую, или секреторную фазу. В
    связи с этим, частота высеваемости и количество строго анаэробных и
    большинства аэробных представителей нормальной микрофлоры выше в
    пролиферативную фазу, чем в секреторную. Поэтому наибольшую информацию о
    количественном и качественном составе вагинальной микрофлоры можно
    получить на 2-14 дни менструального цикла. Наименьшее количество
    микроорганизмов во влагалище определяется в период менструации. Уровень
    лактофлоры при этом остается постоянным.
    Морфофункциональные, физиологические и биохимические изменения в генитальном тракте во время
    беременности приводят к тому, что вагинальная микрофлора становится
    более однородной. В течение беременности концентрация гликогена во
    влагалище у женщин увеличивается. Создаются благоприятные условия для
    жизнедеятельности лактобактерий, количества которых во влагалище
    беременных женщин значительно превышают таковые во влагалище у
    небеременных женщин. Эти изменения достигают пика в III триместре
    беременности, что в последующем снижает вероятность контаминации
    (заражения) плода условнопатогенными микроорганизмами при его
    прохождении через родовые пути.
    Во время родов происходит первичная контаминация организма ребенка, в
    норме стерильного до рождения, вагинальной микрофлорой. Состав
    вагинальной микрофлоры роженицы в последующем определяет состав
    микрофлоры конъюктивы, желудочного аспирата, кожных покровов, которые
    идентичны микрофлоре родового канала матери, а риск развития
    инфекционного процесса у новорожденных находится в прямой зависимости от
    степени обсемененности околоплодных вод. Вагинальная микрофлора
    роженицы играет также важную роль в формировании нормальной микрофлоры
    кишечника у новорожденных, что определяет характер течения периода
    новорожденности.
    После родов в микрофлоре влагалища происходят существенные изменения – как
    качественные так и количественные. Эти изменения могут быть связаны со
    значительным снижением уровня эстрогенов, особенно в III триместре
    беременности, возможностью травматизации влагалища и его контаминацией
    кишечной микрофлорой во время родов. В послеродовом периоде существенно
    увеличиваются количества неспорообразующих грамотрицательных строгих
    анаэробов – Bacteroides spp. и грамотрицательных
    факультативно-анаэробных бактерий – E.coli и происходит снижение уровней
    лакто- и бифидобактерий. Нарушения нормальной вагинальной микрофлоры в
    послеродовом периоде могут способствовать развитию инфекционных
    осложнений в матке и придатках. Изменения микрофлоры у рожениц являются
    транзиторными, и к 6-й неделе послеродового периода вагинальная
    микрофлора восстанавливается до нормы.
    При наступлении менопаузы в генитальном тракте существенно снижаются уровни
    эстрогенов и, соответственно, гликогена. Снижаются количества лакто- и
    бифидобактерий. В этот период у женщин рН вагинальной среды приобретает
    нейтральные значения. Качественный состав микрофлоры становится скудным.
    Понижается общий уровень бактерий. Среди выявляющихся во влагалище
    микроорганизмов преобладают облигатно-анаэробные бактерии.

  6. CIIATb_HUKOGDA_HE_PO3HO Ответить

    У/г забор
    Стандартные условия:     В течение рабочего дня ДЦ.
    Важно:
    – На протяжении 2-х суток перед забором материала не применять препаратов местного значения (свечи, спринцевания и др.), воздержаться от незащищённых половых контактов
    – На протяжении 2 часов воздержаться от мочеиспускания
    – Сдавать до лечения или не раньше, чем через 21 день после окончания курса антибактериальной, антимикотической терапии (если другое не определено лечащим врачом).
    Возможно:     Возможны отклонения от стандартных условий по согласованию с врачом.
    Внимание: Условия подготовки к сдаче урогенитального материала определяются врачом.
    При особых указаниях врача берется в соответствии с указанной точкой забора. Другой тип БМ
    Стандартные условия:     В течение рабочего дня отделений МЛ “ДІЛА”.
    Внимание: В работу может быть принят для данного метода различный тип биоматериала (это определяет только заказчик, указывая в направлении).
    Вы можете добавить данное исследование в корзину на этой странице

    Интерференция:

    Прием антисептиков и/или других антибактериальных, противогрибковых, местных противозачаточных препаратов искажает результаты исследования.

    Интерпретация:

    pH вагинального отделяемого/Микроскопия урогенитального мазка (ж) – Положительный результат одного из показателей позволяет выявить дисбиоз влагалища
    Диагностика бактериального вагиноза ФЕМОФЛОР 8 – Определяемые показатели (норма): Контроль взятия материала (КВМ )> 104 ГЭ/образец,
    Общая бактериальная масса (ОБМ) 106 – 108 ГЭ/образец,
    Оценка нормобиоты – лактобактерий/Lactobacillus spp. (ЛБ) > 106 КОЕ/мл,
    Оценка факультативно-анаэробных и облигатно-анаэробных микроорганизмов (Enterobacteriaceae, ПЦР, Streptococcus spp., Gardnerella vaginalis/Prevotella bivia/Porphyromonas spp, Eubacterium spp) < 104 КОЕ/мл, M. hominis < 104 ГЭ/образец, Грибы рода Candida < 103 ГЭ/образец, M. genitalium Не обнаружено. Варианты заключений: 1. Нормоценоз. 2. Абсолютный нормоценоз. 3. Условный нормоценоз. 4. Умеренный дисбиоз влагалища. 5. Выраженный дисбиоз влагалища. 6. Аэробный дисбиоз. 7. Анаэробный дисбиоз. 8. Смешанный дисбиоз. pH вагинального отделяемого/Микроскопия урогенитального мазка (ж) - отрицательный результат свидетельствует о клеточном составе, согласно точкам забора биоматериала, соответствующем нормобиоте. Диагностика бактериального вагиноза ФЕМОФЛОР 8 - Определяемые показатели (норма): Контроль взятия материала (КВМ) > 104 ГЭ/образец,
    Общая бактериальная масса (ОБМ) 106 – 108 ГЭ/образец,
    Оценка нормобиоты – лактобактерий/Lactobacillus spp. (ЛБ) > 106 КОЕ/мл,
    Оценка факультативно-анаэробных и облигатно-анаэробных микроорганизмов (Enterobacteriaceae, ПЦР, Streptococcus spp., Gardnerella vaginalis/Prevotella bivia/Porphyromonas spp, Eubacterium spp) < 104 КОЕ/мл, M. hominis < 104 ГЭ/образец, Грибы рода Candida < 103 ГЭ/образец, M. genitalium Не обнаружено. Варианты заключений: 1. Нормоценоз. 2. Абсолютный нормоценоз. 3. Условный нормоценоз. 4. Умеренный дисбиоз влагалища. 5. Выраженный дисбиоз влагалища. 6. Аэробный дисбиоз. 7. Анаэробный дисбиоз. 8. Смешанный дисбиоз.

Добавить ответ

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *